Патент на изобретение №2225041
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ПАТОЛОГИЧЕСКИХ КОЖНЫХ РУБЦОВ
(57) Реферат: Изобретение относится к моделированию в медицине и может быть применимо для моделирования патологических кожных рубцов. Иссекают полнослойный лоскут кожи в центре спины у белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г в продольном направлении площадью 5х4 см2. Фиксируют края полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам непрерывным обвивным швом нитью кетгута с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта. В частном случае используют полированный нехромированный кетгут 4. Способ позволяет создать модель, максимально приближенную к морфологической структуре послеоперационного кожного рубца человека. 1 з.п.ф-лы, 7 ил. Изобретение относится к экспериментальной медицине, конкретно к экспериментальной хирургии и гистологии, цитологии и клеточной биологии, и касается способов моделирования патологического кожного рубца. В литературе не найдено способов моделирования патологических кожных рубцов в эксперименте. Задачей, решаемой данным изобретением, является создание модели послеоперационного кожного рубца по своим морфологическим и патофизиологическим характеристикам близкой к патологическим рубцам человека (гипертрофическим и келоидным рубцам), позволяющей изучать характер влияния различных факторов, в том числе используемых с лечебной целью, на процессы формирования и ремоделирования рубцовой ткани. Поставленная задача достигается способом моделирования патологического кожного рубца путем иссечения полнослойного лоскута кожи в центре спины у белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г в продольном направлении площадью 5х4 см2 с последующей шовной фиксацией краев полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам непрерывным обвивным швом нитью полированного нехромированного кетгута 4 с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта при сроке формирования рубца в течение 50-55 суток. Данные отличительные признаки не найдены в проанализированной авторами научно-медицинской литературе, являются новыми и не вытекают явным образом для специалиста из уровня техники. Предлагаемая модель прошла экспериментальные исследования на кафедре гистологии, цитологии и эмбриологии СГМУ. Таким образом, данное техническое решение соответствует критериям изобретения: “новизна”, “изобретательский уровень”, “промышленно применима”. Способ осуществляют следующим образом. В качестве экспериментальных животных используют белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г. Предварительно волосы на спине животных коротко выстригают ножницами без излишней травматизации кожи и выщипывания волос. Крыс фиксируют в станке в положении на животе. Под ингаляционным масочным наркозом парами эфира производят иссечение полнослойного лоскута кожи 5х4 см2 в центре спины в продольном направлении. Края сформированного полнослойного кожного дефекта подшивают непрерывным обвивным швом к подлежащим мышцам без стягивания краев нитью полированного нехромированного кетгута 4 с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта. Раневую поверхность промывают 0,5%-ным раствором хлорамина. Длительность операции составляет 5 минут. При выполнении данной методики летальные исходы у экспериментальных животных отсутствовали. Послеоперационные раны заживают в естественных условиях с формированием массивного струпа темно-коричневого цвета до 5-6 мм толщиной. На 50-55 сутки эксперимента формируются обширные грубые послеоперационные рубцы. Животных содержат в стационарных условиях вивария на обычном брикетном питании с добавлением овощей, творога; при дозированном освещении (12:12, свет с 8 часов). В одной клетке содержат по 3 крысы. Ежедневно всех животных осматривают, оценивают их общее состояние, внешний вид, пищевую возбудимость, двигательную активность, характер и фазу течения раневого процесса. Массу тела измеряют на медицинских весах, размеры раневого дефекта и сформированного рубца линейкой. Пример выполнения способа. 2.02.2002. Белую беспородную крысу-самца массой 190 г фиксировали в станке в положении на животе. Коротко выстригли волосы на спине. Под эфирным масочным наркозом иссекли полнослойный кожный лоскут 5х4 см2 в центре спины в продольном направлении. Края сформированного полнослойного кожного дефекта подшили непрерывным обвивным швом к подлежащим мышцам без стягивания краев нитью полированного нехромированного кетгута 4 с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта. Раневую поверхность промыли 0,5%-ным раствором хлорамина. Длительность операции составила 5 минут. Послеоперационная рана заживала в естественных условиях. За счет фиксации краев полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам ранняя фаза контракции раны ограничивалась, и площадь полнослойного кожного дефекта оставалась фактически неизменной на протяжении первых 7 суток в послеоперационном периоде и незначительно сокращалась в сроки до 14-15 суток послеоперационного периода. Заживление раны протекало с формированием грубого темно-коричневого струпа до 5-6 мм толщиной, который со временем уплотнялся и был интимно сращен с дном раны. Формирование рубца завершилось к 28.03.2002. Таким образом, длительность процесса заживления раны вплоть до периода рубцевания с отторжением струпа и полной эпителизацией гранулирующей поверхности составила 55 суток от момента операции. На 55-е сутки произвели забор полученного рубца и окружающей кожи для гистологического исследования. При заборе материала на момент формирования рубца, а также через 10, 25, 40 суток с момента его формирования обращают на себя внимание технические трудности, вызванные плотной, грубой текстурой как самого рубца, так и фиброзных сращений рубцового регенерата и окружающей его кожи с подлежащими мягкими тканями. После взятия материала рубцы с окружающей их кожей фиксировали в жидкости Карнуа и 12%-ном растворе нейтрального формалина. Депарафинированные срезы толщиной 5-7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином, а также по Ван-Гизону. Тучные клетки выявляли толуидиновым синим. Гистохимически определяли гликоген и нейтральные гликопротеиды – ШИК-реакцией по Мак-Манусу, гликозаминогликаны – окраской альциановым синим по Стидмену (рН 1,0; 2,5), эластические волокна – орсеином по Унна-Тенцеру, нуклеиновые кислоты – окраской метиленовым зеленым и пиронином по Браше. Для выявления нервных элементов использовали материал, зафиксированный в 12%-ном растворе нейтрального формалина. Приготовленные на криостате срезы толщиной 15-20 мкм импрегнировали азотнокислым серебром по Бильшовскому-Грос в модификации А.И. Рыжова (1960), а также окрашивали суданом черным на миелин. Для электронной микроскопии материал фиксировали в 2,5% глутаральдегиде, забуференном на 0,2 М какодилатном буфере (рН 7,2) по D.D. Sabatini, К. Bensch, R. J. Barrnett (1963) при температуре 4oС. Затем постфиксировали в 1%-ном растворе четырехокиси осмия в течение 4 часов, дегидратировали и заливали в аралдит. Срезы получали на ультратоме LKB-III (Швеция). Полутонкие срезы окрашивали толуидиновым синим, ультратонкие контрастировали уранилацетатом и цитратом свинца. Изучали в электронном микроскопе JEM – 100 СХ-II (Япония). Проведен морфоколичественный анализ структурной перестройки рубцовой ткани по методу Г.Г. Автандилова [1]. Подсчет количества тучных клеток, сосудов, фибробластов проводили на сериальных срезах через каждые 150-200 мкм рубцовой ткани при увеличении х400, используя рамку площадью 0,0484 мм2. По результатам подсчета определялась удельная плотность структур. Исследовали динамику удельного количества основных структурно-тканевых элементов. Измеряли толщину рубца, эпидермиса и собственно кожи. Материалы морфоколичественных исследований обрабатывали по правилам параметрической статистики с определением критерия Стъюдента. Анализ результатов гистологического исследования проводился в сравнении с группами: интактных животных (группа контроля) и группой животных, у которых иссекался полнослойный кожный лоскут тех же локализаций и размеров, но без подшивания краев к подлежащим мышцам (группа сравнения). Исследования показали, что созданная модель кожного послеоперационного рубца существенно отличается от группы сравнения и имеет следующие признаки, характерные для патологического рубца: 1) обширный, избыточный объем рубцовой ткани; так при формировании модели патологического рубца – длина рубца на момент его формирования составляла (493) мм, ширина (152) мм, площадь рубца – 32-35% площади удаленного лоскута и не уменьшалась в сроки до 95 суток эксперимента, а у группы сравнения длина рубца составляла (483) мм, ширина (91) мм, площадь рубца занимала 21-25% площади удаленного лоскута, которая имела тенденцию к уменьшению (р0,05); 2) длительное нарушение процесса эпителизации раны с неполным восстановлением архитектоники эпидермиса и явлениями кариопикноза (фиг.1); 3) наличие в толще рубца толстых, грубых пучков коллагеновых фуксинофильных волокон с явлениями мукоидного набухания; 4) отсутствие эластических волокон и вновь сформированных придатков кожи в сроки до 95 суток эксперимента (фиг.2); 5) снижение удельной плотности сосудов и длительно сохраняющаяся лейкоцитарная инфильтрация рубцовой ткани; 6) многообразие клеток фибробластического ряда различной степени зрелости, что обеспечивает длительное поддержание популяции клеток в активном состоянии и препятствует процессам ремоделирования рубцовой ткани; 7) преобладание гиалуроновой кислоты, слабокислых сульфатированных мукоидных веществ и сиаломуцинов в межклеточном веществе (фиг.3); 8) наличие выраженных морфологических изменений нервного аппарата (варикозных утолщений и натеков нейроплазмы, тотальной гиперимпрегнации нервных волокон, чередования участков аргирофобии и аргирофилии, наличие участков рубцовой ткани с явлениями гипериннервации (фиг.4), а также причудливые деформации нервных волокон (фиг.5)); 9) замедленная и неадекватная реакция тучных клеток в рубце (фиг.6) и окружающей его коже (фиг.7) на поздних этапах заживления ран в фазе рубцевания. Экспериментальные исследования были проведены на 87 животных, у которых был получен грубый кожный рубец, имеющий описанные выше морфологические признаки патологического рубца. Совокупность существенных признаков, а именно выбор экспериментального животного – крысы, иссечение полнослойного кожного лоскута определенного размера 5х4 см2, подшивание краев сформированного полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам, а также использование в качестве шовного материала кетгута, позволяет создать послеоперационный кожный рубец, близкий по патофизиологическим и морфологическим критериям к патологическим (гипертрофическим и келоидным) рубцам кожи человека. В качестве материала были выбраны беспородные белые крысы-самцы, так как процесс рубцевания кожи у крыс имеет общие закономерности с человеком [2, 3] . Иссечение полнослойных кожных лоскутов площадью 5х4 см2 позволяет сформировать грубый рубец обширных размеров, в то время как иссечение лоскутов кожи меньшей площади приводит к образованию более нежных рубцов. Подшивание краев сформированного полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам осуществлялось с целью ограничения ранней фазы контракции, что приближает экспериментальный раневой процесс к человеческому, так как контракционная способность кожи человека меньше, чем у большинства животных. Для моделирования рубца среди разнообразия шовного материала мы использовали кетгут, который, являясь биологическим рассасывающимся шовным материалом, обладает высокой фитильностью и сенсибилизирующим действием [4, 5]. Данные побочные эффекты кетгута способствуют поддержанию воспалительного процесса в ране и формированию более грубого рубца. На 50-55 сутки эксперимента заканчиваются процессы формирования рубцовой ткани и эпителизации поверхности и начинается фаза ремоделирования рубцовой ткани. Таким образом, как показали экспериментальные исследования, впервые создана модель патологического кожного рубца, максимально приближенная к морфологической структуре патологического послеоперационного кожного рубца человека. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. – М.: Медицина, 1990, 384 с. ПЕРЕЧЕНЬ ПРИЛАГАЕМЫХ ЧЕРТЕЖЕЙ Фиг. 1. Участок наползания регенерирующего эпителия при моделировании патологического рубца на 55 сутки эксперимента. Окраска гематоксилином и эозином, х 150. Фиг.2. Многочисленные фуксинофильные коллагеновые волокна в зрелом патологическом рубце на 90 сутки эксперимента. Окраска по Ван Гизону, х150. Фиг.3. Несульфатированные гликозаминогликаны в собственно коже патологического рубца на 80 сутки эксперимента. Окраска альциановым синим по Стидмену рН 2,5 с докраской ядер гематоксилином, х600. Фиг.4. Участок гипериннервации рубца на 90 сутки эксперимента по моделированию патологического кожного рубца. Импрегнация азотнокислым серебром по Бильшовскому-Грос в модификации А.И. Рыжова, х150. Фиг. 5. Клубочковидная деформация нервных волокон в модели патологического кожного рубца на 90 сутки эксперимента с подшиванием краев раны. Импрегнация азотнокислым серебром по Бильшовскому-Грос в модификации А.И. Рыжова, х150. Фиг.6. Динамика изменения количества тучных клеток в модели патологического рубца. Фиг. 7. Динамика изменения количества тучных клеток в коже, окружающей патологический рубец. Формула изобретения 1. Способ моделирования патологических кожных рубцов, включающий иссечение полнослойного лоскута кожи в центре спины у белых беспородных крыс-самцов массой 180-200 г в продольном направлении площадью 54 см2 и последующую шовную фиксацию краев полнослойного кожного дефекта к подлежащим мышцам непрерывным обвивным швом нитью кетгута с сохранением площади первоначально нанесенного дефекта при сроке формирования рубца 50-55 суток. 2. Способ моделирования патологических кожных рубцов по п.1, отличающийся тем, что используют полированный нехромированный кетгут № 4. РИСУНКИ
MM4A – Досрочное прекращение действия патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе
Дата прекращения действия патента: 17.09.2004
Извещение опубликовано: 20.02.2007 БИ: 05/2007
|
||||||||||||||||||||||||||