Патент на изобретение №2207547

Published by on




РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ



ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА
ПО ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ СОБСТВЕННОСТИ,
ПАТЕНТАМ И ТОВАРНЫМ ЗНАКАМ
(19) RU (11) 2207547 (13) C1
(51) МПК 7
G01N21/64, C12P1/06
(12) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ПАТЕНТУ

Статус: по данным на 28.03.2011 – действует

(21), (22) Заявка: 2001129355/13, 01.11.2001

(24) Дата начала отсчета срока действия патента:

01.11.2001

(45) Опубликовано: 27.06.2003

(56) Список документов, цитированных в отчете о
поиске:
ВИКТОРОВ А.В. и др. ВЭЖХ-флуоресцентный метод определения микроколичеств аверсектина С в растительных объектах. -Биотехнология, 1996, №6, с.55-62. PRABHU S.V. et al. J. Agric. Food Chem. 1992, v.40, p.622-625. RU 2083970 С1, 10.07.1977.

Адрес для переписки:

121248, Москва, а/я 18, пат.пов. В.А.Хорошкееву, рег.№ 78

(71) Заявитель(и):

Мосин Владимир Александрович,
Дриняев Виктор Антонович

(72) Автор(ы):

Кругляк Е.Б.,
Кокоз Ю.М.,
Тер-Симонян В.Г.,
Авчук С.В.,
Зиганшин Р.У.,
Ашин В.В.,
Мосин В.А.,
Дриняев В.А.

(73) Патентообладатель(и):

Мосин Владимир Александрович,
Дриняев Виктор Антонович

(54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКРОКОЛИЧЕСТВ АВЕРМЕКТИНОВ В ПРОДУКТАХ ЖИВОТНОГО И РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ

(57) Реферат:

Изобретение предназначено для использования в области санитарно-гигиенической оценки пищевых продуктов и касается определения микроколичеств соединений авермектинового ряда в продуктах растительного и животного происхождения, после применения препаратов, содержащих авермектины и используемых для защиты животных и растений от экто- и эндопаразитов. Способ определения микроколичеств авермектинов в продуктах животного и растительного происхождения включает отбор пробы, ее гомогенизацию, экстракцию из пробы авермектинов, их очистку, получение флуоресцирующих производных авермектинов и последующее их определение ВЭЖХ-флуоресцентным методом. Получение флуоресцирующих производных проводят в уксусном ангидриде в присутствии N-метилимидазола при нагревании. Очистку авермектинов проводят методом скоростной хроматографии сначала на катионообменном, а затем на анионообменном сорбенте. В качестве катионообменного сорбента используют модифицированный силикагель с привитыми октильными группами, а в качестве анионообменного сорбента используют модифицированный силикагель с привитыми NH-группами. При получении флуоресцирующих производных реакционную смесь выдерживают на кипящей водяной бане в течение часа. Перед выдержкой на водяной бане реакционную смесь в течение 20-40 с можно обработать ультразвуком. Изобретение позволяет определить в микроколичествах все компоненты авермектинового комплекса. 5 з.п. ф-лы, 6 ил., 4 табл.

Изобретение относится к области санитарно-гигиенической оценки пищевых продуктов и касается определения микроколичеств соединений авермектинового ряда в продуктах растительного и животного происхождения после применения препаратов, содержащих авермектииовый комплекс – аверсектин С, таких как аверсект-2, универм, фитоверм и др., и используемых для защиты животных и растений от экто- и эндопаразитов.

Предшествующий уровень техники
Авермектины – соединения, обладающие широким спектром инсектоакаронематоцидного действия, широко используются для профилактики и лечения паразитарных заболеваний животных и для защиты сельскохозяйственных культур от вредителей (В.А.Дриняев и др., Аверсектин С: физико-химические и биологические свойства. Прикладная биохимия и микробиология, 1999, том 35, 2, с.199-205). По характеру воздействия авермектины относятся к нейротоксинам и используются в практике в микродозах. Содержание авермектинов в продуктах питания строго ограничено соответствующими нормативными документами и не должно превышать 0,005 мг на кг продукта, в связи с чем необходимы высокочувствительные методы определения.

По своему химическому строению все авермектины являются 16-членными макролидными лактонами, содержащими по два остатка олеандрозы. Основные авермектины имеют обозначения 1 A2; В1 и В2.

Авермектины группы А и группы В отличаются между собой заместителем у 5-го углеродного атома макролидного кольца.

Известен высокочувствительный способ определения микроколичеств авермектина B1 – абамектина и его дигидропроизводного ивермектина, основанный на получении их флуоресцирующих производных при воздействии трифторуксусным ангидридом в присутствии N-метилимидазола в ацетонитриле с последующим определением методом флуоресцентной жидкостной хроматографии: детектирование ведут при длинах волн возбуждения и эмиссии 365 и 470 нм соответственно. Чувствительность метода составляет 0,004-0,005 мг в кг продукции. Описанный метод рекомендован для определения абамектина и ивермектина в продуктах питания как растительного, так и животного происхождения после применения таких препаратов, как вертимек, ивомек и др. (Sunil V. Prabhu et al. Rapid and Sensitive High-Performance Liquid Chromatographic Method for the Quantitation of Abamectin and Its Delta 8,9-Isomer, J. Agric. Food Chem. 1992, 40, 622-625). Описан также способ получения флуоресцирующего производного авермектина 2 с использованием трифторуксусного ангидрида в присутствии N-метилимидазола (А. В.Викторов и др., ВЭЖХ-флуоресцентный метод определения микроколичеств аверсектина С в растительных объектах. Биотехнология, 1996, 6, с.55-62).

Недостаток известных способов состоит в том, что он дает возможность получать производные только авермектинов группы В, имеющих в своей молекуле гидроксильную группу у пятого углеродного атома. Авермектины группы А в этом положении имеют группу ОСН3. Метальный радикал в С5 положении препятствует получению флуоресцентных производных авермектинов группы А.

Другим недостатком известных способов является высокая лабильность получаемых производных. Они сохраняют флуоресценцию в течение всего нескольких часов при хранении их при пониженной температуре, что ограничивает возможности анализа.

Сущность изобретения
Для получения возможности определять все авермектины, входящие в состав аверсектина С, разработан прием предварительного деметилирования метальных групп, в том числе в положении С5-ОСН3 сайта в структуре авермектинов группы А, что обеспечивает дальнейшее получение флуоресцирующих производных. Авермектины группы В при этом также образуют флуоресцирующие производные.

Способ определения микроколичеств авермектинов в продуктах животного и растительного происхождения включает отбор пробы, ее гомогенизацию, экстракцию из пробы авермектинов, их очистку, получение флуоресцирующих производных авермектинов и последующее их определение ВЭЖХ-флуоресцентным методом (ВЭЖХ – высокоэффективная жидкостная хроматография).

Экстрагентами авермектинов могут служить изооктан, этилацетат, метанол и др.

Очистку авермектинов проводят методом скоростной хроматографии сначала на катионообменном, а затем на анионообменном сорбенте. В качестве катионообменного сорбента преимущественно используют модифицированный силикагель с привитыми октальными группами (патрон С-8 с обращенной фазой), а в качестве анионообменного сорбента – модифицированный силикагель с привитыми NH2– группами (патрон с прямой фазой).

Получение флуоресцирующих производных проводят в уксусном ангидриде в присутствии N-метилимидазола при нагревании. Оптимальное соотношение уксусного ангидрида и N-метилимидазола составляет 2:1. При получении флуоресцирующих производных реакционную смесь обычно выдерживают на кипящей водяной бане в течение часа. Возможно также перед выдержкой на водяной бане озвучить реакционную смесь в течение 20-40 секунд в ультразвуковой бане.

Хроматографический анализ производных на колонке диасорб С-16 в изократическом режиме в системе метиловый спирт:вода в соотношении 98:2 показал, что все они могут быть обнаружены с помощью флуоресцентного детектора при длинах волн возбуждения и эмиссии 370 и 465 нм соответственно. При этом производное авермектина А1 элюируется с временем удерживания между 9 и 10 мин, что совпадает с временем удерживания производного авермектина B1. Производное авермектина А2 элюируется с временем удерживания между 7-й и 8-й мин, что совпадает с временем удерживания производного авермектина В2.

На хроматограмме производного, полученного для комплексного авермектинового препарата – аверсектина С – обнаруживаются два основных пика, соответствующих авермектинам серии 1 и 2 (фиг.1).

На всех хроматограммах обнаруживается пик со временем удерживания между 6-й и 7-й минутами, относящийся к продукту взаимодействия уксусного ангидрида и N-метилимидазола (контрольная проба: уксусный ангидрид + N-метилимидазол – условия реакции те же).

Отклонение от оптимального соотношения уксусного ангидрида и N-метилимидазола (2:1) приводит к снижению выхода реакции деметилирования. Реактивы – уксусный ангидрид и N-метилимидазол берут в избыточном количестве, достаточном для определения 4 мкг авермектинов, что значительно превышает содержание остаточных количеств авермектинов в исследуемых объектах. Подобранный объем реакционной смеси для проведения дериватизации – 15 мкл является оптимальным. Его увеличение приводит к снижению выхода производных и резкому увеличению образования побочных продуктов. Уменьшение выхода продуктов дериватизации наблюдается при снижении температуры проведения процесса.

Установлена корреляционная зависимость интенсивности флуоресценции от количества авермектинов, участвующих в реакции.

Производные авермектинов, получаемые предлагаемым методом, устойчивы.

Уровень флуоресценции продуктов реакции сохраняется в течение длительного времени (сроки наблюдения – 14 дней), хранение при -20o и +20oС, что облегчает проведение серийных анализов при осуществлении контроля за содержанием авермектинов в исследуемых объектах.

Примеры осуществления предлагаемого изобретения
Пример 1. Установление зависимости интенсивности флуоресценции от концентрации авермектина A1.

Проведение реакции дериватизации. В стеклянные пробирки внесли по 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70 и 80 нг авермектина A1 в метанольном растворе. Растворы упарили в вакуум-сушильном шкафу досуха. В каждую пробирку внесли по 10 мкл свежеперегнанного уксусного ангидрида и по 5 мкл N-метилимидазола. Пробирки плотно закрыли и поместили в кипящую баню на 1 час, после чего образцы охладили и довели объем каждой пробы до 500 мкл ацетонитрилом.

Проведение хроматографического анализа. На хроматографическую колонку, заполненную обращенной фазой Диасорб С-16, нанесли 50 мкл подготовленного образца. В качестве подвижной системы использовали смесь метилового спирта с водой в соотношении 98:2 соответственно. Скорость потока 0,8 мл/мин. Давление 120-160 атм. Детектирование вели при длинах волн возбуждения и эмиссии 365 и 470 нм. На хроматограммах отмечали время удерживания производного. Интенсивность флуоресценции характеризовали площадью пика, выраженной в виде сигнала mVс.

Время удерживания производного авермектина А1 составило 10 мин. Зависимость площади хроматографического пика от количества авермектина A1, внесенного в колонку, представлена на фиг.2.

Пример 2. Установление зависимости интенсивности флуоресценции от концентрации авермектина А2.

Для проведения реакции взяли те же количества авермектина A2, что и в примере 1. Условия проведения реакции и анализа такие же, как и в примере 1.

Время удерживания производного А2 составило 6,5 мин. Зависимость площади хроматографического пика от количества авермектина Аз, внесенного в колонку, представлена на фиг.3.

Пример 3. Установление зависимости интенсивности флуоресценции от концентрации авермектина B1.

Для проведения реакции взяли такие же концентрации, какие указаны в примере 1. Условия проведения реакции и анализа такие же, как в примере 1.

Время удерживания производного B1 10 мин, что совпадает с временем удерживания авермектина A1. Зависимость площади хроматографического пика от количества авермектина B1 внесенного в реакцию, представлена на фиг.4.

Пример 4. Установление зависимости интенсивности флуоресценции от концентрации авермектина В2.

Для проведения реакции взяли такие же концентрации авермектина B2, как и для других авермектинов (примеры 1-3). Условия проведения реакции такие же, как в предыдущих примерах. Зависимость площади хроматографического пика от концентрации авермектина В2, внесенного в реакцию, представлена на фиг.5.

Пример 5. Установление зависимости интенсивности флуоресценции от концентрации аверсектина С.

Для проведения реакции брали такие же концентрации, как и для индивидуальных авермектинов. Условия проведения реакции такие же, как в предыдущих примерах. При хроматографировании продуктов реакции на хроматограмме обнаруживаются два пика (кроме побочного), соответствующие по времени удерживания производным авермектинов А1 и B1 и А2 и В2. Сумма площадей двух пиков находилась в прямой зависимости от концентрации аверсектина С, взятого в реакцию (фиг.6).

Пример 6. Описанным в примере 1 способом получили производные для каждого из 4-х авермектинов. После проведения реакции измерили интенсивность флуоресценции. Реакционные смеси заложили на хранение при комнатной температуре и периодически отбирали пробы для хроматографического анализа.

В табл. 1 приведены данные по интенсивности флуоресценции производных (площади пиков mVс) в процессе хранения.

Пример 7. Определение авермектинов A1, A2, В1 и В2 и аверсектина С в молоке (модельные опыты).

Индивидуальные авермектины и аверсектин С внесли в молоко в количествах, указанных в таблице 2. Для анализа 1 мл молока каждого образца добавили 5 мл смеси ацетон:вода (1:1) и перемешали в течение 5 минут. Из полученной эмульсии авермектины экстрагировали дважды 5 мл изооктана. Экстракцию вели при встряхивании с последующим центрифугированием. Изооктановые экстракты упарили, остаток растворили в 4 мл ацетонитрила. Ацетонитрильный раствор 5 раз промыли гексаном, а затем поместили в стеклянные пробирки и упарили досуха. Получение флуоресцирующих производных и хроматографический анализ вели так, как в примере 1.

Результаты определения авермектинов представлены в табл. 2.

Пример 8. Определение авермектинов А1, A2, B1 и В2 и аверсектина С в плазме (модельный опыт).

Индивидуальные авермектины и аверсектин С внесли в плазму, полученную из крови телят в количествах, указанных в таблице 3. Далее вели подготовку образцов к анализу. 1,0 мл Плазмы крови поместили в гомогенизатор, туда же добавили 3 мл смеси этиловый спирт:вода (1:1). Обработку вели при 4500 об/мин в течение 10 минут. Из полученной эмульсии авермектины экстрагировали этилацетатом 3 раза порциями по 8 мл. Экстракцию вели при встряхивании с последующим центрифугированием. Этилацетатные экстракты отобрали и упарили в вакууме досуха. Остаток растворили в 4 мл ацетонитрила. Ацетонитрильный раствор 3 раза промыли гексаном, далее упарили досуха. Получение флуоресцирующих производных и проведение хроматографического анализа вели, как указано в примере 1. Результаты определения авермектинов в плазме представлены в табл 3.

Пример 9. Определение авермектинов A1, A2, В1 и В2 и аверсектина С в сладком перце.

К образцам гомогенизированной массы сладкого перца, взятым в количестве по 5 г, добавили авермектины и аверсектин С в количествах, указанных в табл. 4. Далее вели подготовку образцов к анализу. Навеску гомогенизированной массы с внесенными авермектинами поместили в центрифужный стакан емкостью 50 мл, добавили 10 мл метилового спирта. Суспензию тщательно перемешали, после чего центрифугировали. Экстракцию метиловым спиртом повторили дважды. Экстракты объединили и разбавили дистиллированной водой до 100 мл. Водно-метановый раствор очистили с помощью твердофазной экстракции патронами диапак-8 и диапак амина. Очищенный раствор упарили досуха. Получение флуоресцирующих производных и хроматографического анализа вели, как указано в примере 1. Результаты определения авермектинов в сладком перце представлены в табл. 4.

Предлагаемое изобретение дает возможность определять в микроколичествах все компоненты авермектинового комплекса в продуктах питания животного и растительного происхождения.

Формула изобретения

1. Способ определения микроколичеств авермектинов в продуктах животного и растительного происхождения, включающий отбор пробы, ее гомогенизацию, экстракцию из пробы авермектинов, их очистку, получение флуоресцирующих производных авермектинов и последующее их определение ВЭЖХ-флуоресцентным методом, отличающийся тем, что получение флуоресцирующих производных проводят в уксусном ангидриде в присутствии N-метилмидазола при нагревании.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что очистку авермектинов проводят методом скоростной хроматографии сначала на катионообменном сорбенте, а затем на анионообменном сорбенте.

3. Способ по п.2, отличающийся тем, что в качестве катионообменного сорбента используют модифицированный силикагель с привитыми октильными группами, а в качестве анионообменного сорбента используют модифицированный силикагель с привитыми NH-группами.

4. Способ по п.1, отличающийся тем, что соотношение уксусного ангидрида и N-метилимидазола составляет 2:1.

5. Способ по п.1, отличающийся тем, что при получении флуоресцирующих производных реакционную смесь выдерживают на кипящей водяной бане в течение часа.

6. Способ по п.5, отличающийся тем, что перед выдержкой на водяной бане реакционную смесь в течение 20-40 с подвергают воздействию ультразвука.

РИСУНКИ

Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5, Рисунок 6, Рисунок 7, Рисунок 8, Рисунок 9, Рисунок 10


MM4A Досрочное прекращение действия патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе

Дата прекращения действия патента: 02.11.2004

Извещение опубликовано: 20.03.2006 БИ: 08/2006


NF4A Восстановление действия патента Российской Федерации на изобретение

Извещение опубликовано: 10.05.2006 БИ: 13/2006


Categories: BD_2207000-2207999