Патент на изобретение №2192638
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ДИФФЕРЕНЦИРОВКИ T-, B-, NK-ЛИМФОЦИТОВ В МАЗКАХ КРОВИ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦ
(57) Реферат: Изобретение относится к ветеринарной медицине, обеспечивает повышение эффективности иммунологических исследований за счет исключения потерь лейкоцитов в процессе получения и обработки материала. Изобретение обеспечивает возможность одновременного определения особо важных клеток, участвующих в формировании неспецифической резистентности организма, определение активности неспецифической эстеразы и повышение экономической эффективности. Для приготовления буферной смеси используют однозамещенный фосфорно-кислый калий (КН2PO4) и двузамещенный фосфорно-кислый натрий (Na2HPO4), затем в инкубационную смесь добавляют буферную смесь, а инкубацию мазков проводят в темноте в течение 2 ч и после высушивания дополнительно окрашивают мазки краской Азур-II. 1 з.п.ф-лы, 2 ил. Изобретение относится к области ветеринарной медицины, в частности иммунологии с/х животных и птиц. Известно решение, где определение популяций лимфоцитов в крови крупного рогатого скота и овец осуществляется путем иммунохимического анализа их поверхности в реакциях розеткообразования с помощью эритроцитарных маркеров (см. “Иммунологические методы исследования в животноводстве”, Методические рекомендации, г. Львов 1987 г., с. 36.). Также известны иммунологические исследования (см. З. Лойда, Р. Госсрай, Т. Шблер Гистохимия ферментов. Лабораторные методы. Пер. с англ. к.б.н. И.Б. Бухвалова, к.м.н. О.В.Копьева, под ред. проф. Н.Т.Райхлина издательство Мир Москва 1982. Стр. 103), включающие подготовку биологического субстрата, обработку его буферно-инкубационной смесью, содержащей фосфатный буфер, ![]() ![]() ![]() ![]() Первичная реакция (реакция ферментативного расщепления) гидролиза нафтилацетата с участием фермента эстеразы (см. схему 1 в конце описания). 2) Вторичная реакция (реакция сочетания), т.е. взаимодействия 1-нафтола с нейтральным прочным синим В (см. схему 2). Пример конкретного осуществления способа определения дифференцировки Т-, В-, NK-лимфоцитов в мазках крови животных и птицы Взятие крови и приготовление мазка Кровь для исследования брали у сельскохозяйственных животных, например у коров, из яремной вены, у птицы из крыловой вены. Из крови готовили мазок. Для этого каплю крови наносили на край сухого обезжиренного стекла, которое удерживали между большим и средним пальцами левой руки. Впереди капли под углом 45o подводили шлифованный край покровного стекла так, чтобы образовавшийся угол между стеклами был равномерно заполнен кровью. Движением правой руки от себя каплю распределяли тонким слоем по поверхности предметного стекла без просветов в виде равномерной полоски, не выходящей за ее края. Мазки сушат на воздухе и фиксируют в парах 40% раствора формалина в течение 5 минут. Для этого на дно эксикатора наливали около 150 мл формалина, оставляли под закрытой крышкой на 30 минут для возгонки паров формалина. Затем осторожно снимали крышку и на решетку эксикатора помещали мазки и закрывали крышкой. Таким образом, мазки фиксируются. Приготовление буферных растворов В начале проводили калибровку иономера рН – 150. В состав буферной смеси входили: однозамещенный фосфорно-кислый калий (KH2РO4 с молекулярной массой 136,1 г/моль), из которого готовили раствор – А; двузамещенный фосфорно-кислый нaтpий (Nа2НPО4 с молекулярной массой 177,9 г/моль), из которого готовили раствор – Б; Приготовление раствора А Для приготовления 25 мл раствора А брали 0,34 г или (340 мг) KH2PO4 и растворяли в небольшом количестве дистиллированной воды затем в мерной колбе объемом 25 мл доводили до метки. Приготовление раствора Б Брали 8,9 г Na2HРО4 и растворяли в небольшом количестве дистиллированной воды, затем в мерной колбе объемом 500 мл доводили до метки. Затем колбы с растворами А и Б оставляли на сутки в темном месте для лучшей диффузии. На следующий день после дополнительного перемешивания смешивали 25 мл раствора А и 475 мл раствора Б, тщательно перемешивали (желательно оставить на сутки) и затем измеряли рН буферного раствора. Очень важно получить рН в пределах от 8,0 до 8,2. Приготовление инкубационной смеси Правильное приготовление инкубационной смеси имеет немаловажное значение для дальнейшей окраски мазков. Готовить инкубационную смесь желательно в затемненной комнате. Для ее приготовления готовят раствор 1 и 2. Приготовление раствора 1 ![]() Берут 6,25 мг красителя нейтрального прочного синего и растворяют его в 6,25 мл дистиллированной воды, смешивая их постепенно. Для поддержания рН добавляют 1,25 мл буферного раствора с рН 8,0-8,2. Полученные растворы смешивают, фильтруют в темноте желательно через стеклянный фильтр. Инкубация мазков. Инкубация мазков проводится исключительно в темноте в течение 2 часов. На фиксированные формалином мазки наносится равномерным слоем инкубационная смесь. Периодически необходимо добавлять смесь, т.к. происходит испарение жидкости, которая включает в себя легко улетучивающиеся вещества (ацетон, нафтилацетат). После инкубации мазки промывают дистиллированной водой и высушивают на воздухе. Для дифференцировки лимфоцитов от других клеток крови в дальнейшем окрашиваем ядра клеток краской Азур – II водным 0,25% раствором в течение от 30 секунд до 1 минуты. После окраски краску сливают, промывают дистиллированной водой мазки высушивают на воздухе. Микроскопия мазков Микроскопия проводят с использованием эмерсионной системы при увеличении (90 х 15). Результаты полученных данных при мискроскопии мазков: Т-лимфоциты содержат одну иди несколько гранул темного цвета, расположенных до периферии клетки. NK-клетки окрашены диффузно в серый цвет. В-лимфоциты имеют окрашенные ядра, клетки не содержат гранул (фиг. 1, 2). Формула изобретения
![]() ![]() ![]() РИСУНКИ
MM4A Досрочное прекращение действия патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе
Дата прекращения действия патента: 10.01.2002
Номер и год публикации бюллетеня: 25-2003
Извещение опубликовано: 10.09.2003
|
||||||||||||||||||||||||||