Патент на изобретение №2192473

(54) СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ГЕРПЕСВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ

(57) Реферат:

Изобретение относится к иммуннобиологии и может быть использовано в медицине. Способ диагностики герпесвирусной инфекции осуществляют путем проведения двухэтапной ПЦР с использованием на первом этапе двух внешних праймеров I и II, а на втором – двух внутренних праймера I и III. Два этапа ПЦР включают три стадии: первая стадия в один цикл включает денатурацию и отжиг, вторая стадия – в 30 циклов включает элонгацию, денатурацию и отжиг, а третья стадия в один цикл включает элонгацию. Продукты амплификации дифференцируют путем рестрикционного анализа, например, электрофорезом в горизонтальном агарозном геле. Способ позволяет одновременно определять четыре типа герпесвирусов в одной пробе. 3 з.п. ф-лы, 3 табл.

Изобретение относится к биотехнологии и может найти применение в медицине. Герпесвирусные инфекции являются широко распространенными вирусными инфекциями человека, имеющими разнообразные клинические проявления, в ряде случаев весьма опасные для жизни индивидуума. Герпесвирусы способны к длительному латентному существованию в организме человека, однако в некоторых случаях они могут реактивироваться и вызывать тяжелые заболевания, вплоть до летальною исхода. В настоящее время известно 8 типов герпесвирусов, среди которых наиболее важное медицинское значение имеют вирус простого герпеса 1 типа (ВПГ 1), вирус простого герпеса 2 типа (ВПГ 2), вирус Эпштейн-Барра – герпесвирус 4 типа (ВЭБ), цитомегаловирус-герпесвирус 5 типа (ЦМВ)
Диагностика герпетических инфекций представляет собой достаточно сложную задачу, что объясняется как широким спектром клинических проявлений, так и недостатками традиционно использующихся диагностических методов. Перспективным подходом для выявления герпетических инфекций является ДНК-диагностика вируса при помощи полимеразной цепной реакции (ПЦР). В настоящее время ПЦР является наиболее чувствительным способом индикации микроорганизмов, способным потенциально обнаруживать единичные вирусные частицы. Прямое определение ДНК возбудителя может служить не только основой для выявления вирусоносительства в любой его форме (латентной или активной), но и для анализа генетических вариантов вируса. Однако известные способы детекции герпесвирусов и диагностики герпесвирусных инфекций заключаются в выявлении только одного типа вируса. Такой подход малоэффективен для клинического применения, т.к. в большинстве случаев возникает вопрос о дифференциальной диагностике.

Известен способ диагностики герпесвирусной инфекции, включающий детекцию вирусной ДНК в исследуемом материале путем проведения двухэтапной ПЦР с использованием на первом этапе двух внешних праймеров и матрицы в виде участка вирусной ДНК с получением амплификата, а на втором этапе – двух внутренних праймеров и матрицы в виде полученного на первом этапе амплификата с последующим определением полученных на втором этапе продуктов амплификации методом горизонтального электрофореза в агарозном геле (С.А.Клинчева и др. Использование метода nested-полимеразой цепной реакции для быстрого выявления цитомегаловируса в лейкоцитах периферической крови пациентов после трансплантации костного мозга. Вопр. вирусологии, 1996, 41.4, с.147-149) – прототип.

Однако данным известным способом определяется только один тип герпесвируса. Для определения других типов герпесвирусов необходимо проведение ПЦР с использованием иных праймеров, что делает определение длительным, дорогостоящим и трудоемким.

Техническим результатом, достигаемым настоящим изобретением, является одновременное определение четырех типов герпесвирусов в одной пробе, снижение трудозатрат, снижение расхода реактивов, ускорение определения.

Указанный технический результат достигается тем, что в способе диагностики герпесвирусной инфекции, включающем детекцию вирусной ДНК в исследуемом материале путем проведения двухэтапной полимеразной цепной реакции с использованием на первом этапе двух внешних праймеров и матрицы в виде участка вирусной ДНК с получением амплификата, а на втором этапе – двух внутренних праймеров и матрицы в виде полученного амплификата с последующей дифференциацией полученных на втором этапе продуктов амплификации, отличающийся тем, что в качестве внешних праймеров используют олигонуклеотиды формулы I и II
I
5′-CGTGTTCGACITTGCCAGCCTGTACCC-3′-
II
5′-TTGCGGACGAGATCCACGCCCTT-3′
а в качестве внутренних праймеров – олигонуклеотиды формулы I и III
III
5′-GICCGTGTCCCCGTAGAGTA-3′
Достигается указанный технический результат тем, что первый и второй этапы полимеразной цепной реакции проводят в три этапа, при этом первый этап в один цикл включает стадию денатурации 4 мин при 95^oС и стадию отжига 2 мин при 60^oС, второй этап в 30 циклов включает стадию элонгации 1 мин при 72^oС, затем денатурацию 40 сек при 95^oС и отжиг 30 сек при 60^oС и третий этап в один цикл-элонгация 4 мин при 72^oС.

Продукты амплификации, полученные на втором этапе, дифференцируют посредством рестрикционного анализа с использованием эндонуклеазы TaqI и RsaI.

Продукты рестрикции ампликонов, полученных на втором этапе, определяют электрофорезом в горизонтальном агарозном геле.

Для создания новой диагностической системы был проведен попарный компьютерный анализ геномов всех герпесвирусов. В результате у герпесвирусов типов 1, 2, 4, 5 был идентифицирован фрагмент в гене ДНК-полимеразы протяженностью около 800 п.н., который был фланкирован двумя консервативными участками, а внутри данного фрагмента содержался еще один консервативный участок. К каждому консервативному участку были сконструированы праймеры формулы I и II для двух консервативных участков, которыми фланкирован идентифицированный фрагмент в гене ДНК-полимеразы и праймер формулы III для консервативного участка внутри фрагмента в гене ДНК-полимеразы.

Несмотря на то, что при 30 циклах первого этапа ПЦР с праймерами формулы I и II не удалось получить видимых ампликонов, при дальнейшем использовании в качестве матрицы полученного амплификата в последующей ПЦР (на втором этапе) были получены хорошо выраженные ампликоны расчетного размера с вирусной ДНК ВПГ 1, ВПГ 2, ВЭБ и ЦМВ.

Проверка специфичности тест-системы на основе праймеров формулы I, II, III показала отсутствие ампликонов при амплификации образцов культур клеток, содержащих вирус герпеса 6 типа и вирус герпеса 8 типа, а также образцов клинического материала от здоровых доноров. При этом использовали коммерческий препарат ДНК вируса герпеса 6-го типа (НИИ эпидемиологии РАМН) и ДНК вируса герпеса 8-го типа (НИИ Канцерогенеза РАМН).

Ниже приведены примеры, иллюстрирующие изобретение.

Пример 1.

Для создания новой диагностической системы был проведен попарный компьютерный анализ геномов всех герпесвирусов. В результате у герпесвирусов типов 1, 2, 4, 5 был идентифицирован фрагмент в гене ДНК-полимеразы протяженностью около 800 п.н., который был фланкирован двумя консервативными участками, а внутри данного фрагмента содержался еще один консервативный участок. К каждому консервативному участку были сконструированы праймеры формулы I и II для двух консервативных участков, которыми фланкирован идентифицированный фрагмент в гене ДНК-полимеразы и праймер формулы III для консервативного участка внутри фрагмента в гене ДНК-полимеразы.

Формула праймера I
5′-CGТGTTCGACТTGCCAGCCTGTACCC-3′
Формула праймера II
5′-TTGCGGACGAGATCCACGCCCТТ-3′
Формула праймера III
5′-GTCCGTGTCCCCGTAGAGTA-3′
Пример 2.

Отработку условий амплификации на первом и втором этапе проводили на клонированных фрагментах вирусной ДНК, полученных из культуральных штаммов: ВПГ1 (Л2), ВПГ2 (ВН), ЦМВ (АД-169), ВЭБ (лимфобластоидная перевиваемая линия P3HR1). Препараты культур клеток получены из лаборатории сравнительной вирусологии НИИ вирусологии им. Д.И.Ивановского РАМН. Условия амплификации на первом и втором этапе одинаковые и представлены в таблице 1.

Пример 3.

Абсолютную чувствительность новой тест-системы определяли в экспериментах с плазмидной ДНК, содержащей клонированные фрагменты вирусов ВПГ 1, ВПГ 2, ЦМВ и ВЭБ. Показали, что чувствительность новой тест системы превышает чувствительность ранее использовавшихся систем. Результаты представлены в таблице 2 и свидетельствуют о высокой чувствительности тест-систем согласно изобретению.

Пример 4.

Размеры ампликонов, получаемых на втором этапе ПЦР, для каждого типа вирусов в новой системе индикации были следующие: ВПГ1 – 531, ВПГ2 – 531, ВЭБ – 537, ЦМВ – 603 т.п.н.

В связи с тем, что размер ампликона 4-х типов герпесвирусов практически одинаковый, что затрудняет их дифференциацию, встал вопрос об удобном в исполнении методе дифференциации герпесвирусов разных типов. Анализ нуклеотидной последовательности получаемого на втором этапе ПЦР амплифицирущегося фрагмента позволил сделать предположение о возможности дифференциации герпесвирусов разного типа с помощью рестрикционного анализа (ПДРФ-полиморфизм длины рестрикционных фрагментов). Выбор рестриктаз для анализа диктовался не только вопросами дифференциации, но и возможностью проведения реакции рестрикции непосредственно в ПЦР-буфере. Учитывая оба вышеназванных фактора, для рестрикционного анализа были отобраны эндонуклеазы TaqI и RsaI. Результаты рестрикционного анализа ампликонов показывают, что рестриктазы TaqI и RsaI позволяют получить наиболее наглядные различия в рестрикционных профилях анализируемых ампликонов. Таким образом, разработанный метод анализа ПДРФ позволяет выявлять генетические различия, присущие герпесвирусам разного типа, и может быть использован для их дифференциации.

Проведенные лабораторные исследования новой универсальной тест-системы на клиническом материале, полученном из Института трансплантологии МЗ РФ, и клиническом материале от больных гинекологического профиля, показали высокие диагностические качества по сравнению с ранее использованными тест-системами. Результаты исследования показаны в таблице 3.

Полученные результаты говорят о том, что новый способ диагностики герпесвирусов прост в исполнении, дешевле раздельных тест-систем и отличается повышенной чувствительностью. Способ позволяет одновременно определять ДНК ВПГ 1, ВПГ 2, ЦМВ и ВЭБ. Присутствие в анализируемом материале вирусов 6-го и 8-го типов не мешает определению.

Формула изобретения

1. Способ диагностики герпесвирусной инфекции, включающий детекцию вирусной ДНК в исследуемом материале путем проведения двухэтапной полимеразной цепной реакции с использованием на первом этапе двух внешних праймеров и матрицы в виде участка вирусной ДНК с получением амплификата, а на втором этапе – двух внутренних праймеров и матрицы в виде полученного амплификата с последующей дифференциацией полученных на втором этапе продуктов амплификации, отличающийся тем, что в качестве внешних праймеров используют олигонуклеотиды формулы I и II
I
5′-CGTGTTCGACTTTGCCAGCCTGTACCC-3′
II
5′-TTGCGGACGAGATCCACGCCCTT-3′
а в качестве внутренних праймеров-олигонуклеотиды формулы I и III
III
5′-GTCCGTGTCCCCGTAGAGTA-3′.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что первый и второй этапы полимеразной цепной реакции проводят в три стадии, при этом первая стадия в один цикл включает денатурацию 4 мин при 95^oС и отжиг 2 мин при 60^oС, вторая стадия в 30 циклов включает элонгацию 1 мин при 72^oС, затем денатурацию 40 с при 95^oС и отжиг 30 с при 60^oС и третья стадия в один цикл-элонгация 4 мин при 72^oС.

3. Способ по любому из пп. 1 и 2, отличающийся тем, что продукты амплификации, полученные на втором этапе, дифференцируют посредством рестрикционного анализа с использованием эндонуклеазы TaqI и RsaI.

4. Способ по любому из пп. 1-3, отличающийся тем, что продукты рестрикции амплификатов, полученных на втором этапе, определяют электрофорезом в горизонтальном агарозном геле.

РИСУНКИ

QB4A Регистрация лицензионного договора на использование изобретения

Лицензиар(ы): Институт молекулярной генетики Российской Академии наук (ИМГ РАН)

Вид лицензии*: НИЛ

Лицензиат(ы): Закрытое акционерное общество “Лабораторная диагностика”

Договор № РД0036786 зарегистрирован 02.06.2008

Извещение опубликовано: 10.07.2008 БИ: 19/2008

* ИЛ – исключительная лицензия НИЛ – неисключительная лицензия