Патент на изобретение №2186049
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) БАКТЕРИЗОВАННОЕ УДОБРЕНИЕ
(57) Реферат: Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано при производстве почвогрунтов и удобрений на основе торфа и биогумуса. Изобретение позволяет повысить продуктивность растений и содержание жизнеспособных клеток при длительном хранении удобрения. Это достигается в бактеризованном удобрении, включающем гуминосодержащую основу из биогумуса и бактериальную добавку, обладающую фунгицидной активностью, выбранную из группы бактерий Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5104-7,5108 кл/г гуминосодержащей основы. Удобрение дополнительно содержит аммиачную воду или мочевину, а в качестве гуминосодержащей основы – торф. 4 з.п. ф-лы, 4 табл. Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано при производстве почвогрунтов и удобрений на основе торфа и биогумуса. Известно бактеризованное удобрение (Авт. свид. СССР, 655694, МКИ: С 05 F 11/08, опубл. 08.04.79), включающее в качестве гуминосодержащей основы торф. Удобрение содержит также мочевину, известь, бактериальную маточную культуру АМБ и препарат Азотобактерин. Наличие в составе извести 0,2-0,3 и мочевины 0,02-0,03 вес. ч. на 100 вес. ч. торфа позволяет повысить его рН примерно до значений 6,5-7. Однако оптимальным для роста и поддержания жизнеспособности клеток Азотобактерина является значение рН 7,5. Недостаток этого удобрения заключается в том, что Азотобактерин находится в неоптимальных условиях кислотности, предопределяющих слабый рост бактерий, и неизбежно ведет к большой потере жизнеспособности клеток при длительном хранении удобрения. Кроме того, этот процесс усугубляется тем, что Азотобактерин вносится в естественные компосты, содержащие множество разнообразной микрофлоры, в т.ч. токсичной, и компост не подвергается стерилизации (пастеризации). Такой состав является удобрительной смесью, но не обладает антигрибной активностью и не снижает поражения растений почвенными фитопатогенами, т.к. бактериальная маточная культура АМБ используется для ускорения процесса компостирования инокулированного торфа, а препарат Азотобактерин выступает только как стимулятор роста растений и слабый фиксатор атмосферного азота. Известно также бактеризованное удобрение (Патент РФ 2125549, МКИ: С 05 F 11/08, опубл. 27.01.99), являющееся наиболее близким аналогом. Удобрение включает гуминосодержащую основу в виде биогумуса с рН 6,5-7,5 и микроорганизмы, обладающие фунгицидной активностью. В биогумус вносится бактериальная культура Bacillus subtilis ИМП-215 в концентрациях 1,109-1,1012 спор на 1 кг биогумуса. К недостаткам удобрения следует отнести то, что входящий в него биогумус содержит случайный и обильный набор микрофлоры и поэтому антифунгальная активность интродуцируемого штамма мала в силу его ингибирования набором этой микрофлоры. В процессе хранения при большой населенности удобрения разнородной микрофлорой происходит интенсивный расход питательных веществ, содержащихся в нем, что приводит к большим потерям интродуцируемого штамма. Кроме того, потери жизнеспособных клеток штамма происходят из-за затрудненной аэрации препарата, обусловленной увеличением плотности влажного биогумуса в процессе хранения препарата (от нескольких недель до 1-2 месяцев). При длительном хранении 8-10 месяцев и более содержание жизнеспособных клеток интродуцируемого штамма снижается столь существенно, что удобрение теряет свое первоначальное предназначение. При использовании удобрения наблюдается небольшое повышение продуктивности растений, обусловленное тем, что большая часть гуматов, содержащаяся в биогумусе, находится в неактивном состоянии и не вовлекается в обмен веществ растения. Изобретение позволяет повысить продуктивность растений за счет синергетического эффекта от двойного активирования гуминосодержащей основы, а также повысить содержание жизнеспособных клеток при длительном хранении удобрения за счет подавления жизнедеятельности микрофлоры, присутствующей в торфе и биогумусе и введения штамма, устойчивого к высокощелочной среде. Это достигается в бактеризованном удобрении, включающем гуминосодержащую основу из биогумуса и бактериальную добавку, обладающую фунгицидной активностью. Новым является то, что оно дополнительно содержит аммиачную воду или мочевину, а в качестве гуминосодержащей основы – торф, при следующем соотношении компонентов, вес. ч: Торф – 100 Биогумус – 10-50 Аммиачная вода или мочевина с содержанием общего азота – 2,0-10,0 при этом бактериальная добавка выбрана из групп бактерий Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5104-7,5108 кл/г гуминосодержащей основы. Бактеризованное удобрение может включать в качестве бактериальной добавки бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д, а также бактерии Bacillus subtilis, штамм Д-606 и бактерии Bacillus polymyxa, штамм 375Д. Эти бактерии обладают наиболее выраженным ингибирующим действием по отношению к фитопатогенным грибам, сохраняя при длительном хранении жизнеспособность в условиях высоких концентраций аммиака. Бактеризованное удобрение может дополнительно содержать 4,5-7,0 вес. ч. доломитовой муки в качестве источника кальция и магния или мела, источника кальция, что влияет на повышение продуктивности растений. Использование в составе аммиачной воды или мочевины с содержанием общего азота 2,0-10,0 вес. ч. влияет на состояние естественной микрофлоры, содержащейся в торфе и биогумусе. Кроме того, они являются источником азота. Более высокие концентрации азота оказывают ингибирующее действие на всходы овощных культур, а более низкие несущественно влияют на рост растений. Были проведены исследования, в результате которых определилось состояние естественной микрофлоры смеси биогумус-торф (торф 100 вес. ч. = 1 кг, биогумус 30 вес. ч. = 0,3 кг) до и после обработки ее раствором аммиака и последующего хранения при комнатной температуре в течение 12 месяцев. Для этого 1,3 кг смеси биогумуса и торфа обрабатывались технической аммиачной водой в количестве 20 г, что в пересчете на общий азот составляет 2,3 вес. ч. Затем периодически отбирали пробу и подсчитывали количество микроорганизмов методом серийного разведения. Результаты опытов приведены в таблице 1. Из таблицы 1 видно, что в смеси, не обработанной аммиачной водой, содержание бактерий и грибов со временем увеличивается. В смеси, обработанной аммиачной водой, к 12 месяцам хранения грибы отсутствуют, а бактерии присутствуют в незначительном количестве. Таким образом, аммиак оказывает стерилизующее действие на естественную микрофлору смеси торф-биогумус: грибы погибают полностью, а количество бактериальной флоры уменьшается в 15-20 раз. Это создает благоприятные условия для развития и сохранения вводимой (интродуцируемой) культуры бактерий при условии ее устойчивости к аммиаку и соответствующих высоких значений рН 9-11. Кроме этого, аммиак (мочевина) активирует органическое вещество субстрата-носителя и почвы (Тишкевич А.В. Теория и практика аммонизации торфа, Минск, Наука и техника, 1972, с.170), что благоприятствует росту растений. Наличие торфа, который является структурирующим материалом в удобрении, уменьшает его слеживаемость, обеспечивая аэрацию (обмен СО2 и О2) внесенным бактериям, что имеет решающее значение в поддержании их жизнеспособности. В процессе определения оптимального состава гуминосодержащих веществ, которые должны служить субстратом-носителем, было установлено, что именно смесь торфа и биогумуса в соотношении вес. ч. торф 100, биогумус 10-50 является оптимальной для роста и сохранения вводимых бактерий. Предварительно торф и биогумус раздельно обрабатывали аммиачной водой с концентрацией аммиака 25%. Аммиачная вода бралась в количестве 20 г к весу торфа 1000 г, что соответствует содержанию общего азота 5,0 вес. ч. и 8 г к весу биогумуса 30 г, что соответствует содержанию общего азота 2,0 вес. ч. Исследования проводились также на смеси, составленной из 1000 г торфа и 20 г биогумуса. Аммиачная вода в этом случае бралась в количестве 14 г на общий вес смеси 1020 г, что в пересчете на общий азот составило 3,0 вес. ч. В полученную таким образом смесь вводили культуру отобранной бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д в количестве 5,0106 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Состав выдерживался 3-12 месяцев и определялось количество жизнеспособных бактерий. рН состава составляло 10. Эта же культура вводилась в обработанные аммиаком биогумус и торф (таблица 2.) Значение рН состава при этом достигает 10-11. Проведенные исследования для разных соотношений компонентов торфа и биогумуса, показали, что наибольшее количество жизнеспособных клеток содержится в бактеризованном удобрении с соотношением компонентов, вес. ч.: торф 100, биогумус 10-50. Подобные результаты были получены в опытах с использованием мочевины и штаммов Bacillus subtilis, штамм 606Д и Bacillus polymyxa, штамм 375Д. Среди ряда микроорганизмов, подавляющих жизнедеятельность грибных и, в меньшей степени, бактериальных фитопатогенов, большая роль отводится споровым бактериям рода Bacillus. Однако состав содержит высокую концентрацию аммиака (мочевины) и соответственно значение рН 10-11, что ограничивает круг жизнеспособных в таких условиях микроорганизмов, потому что, как известно, все бактерии рода Bacillus предпочитают рН 7,0-8,0 см (Смирнов В.В. и др. Спорообразующие аэробные бактерии – продуценты биологически активных веществ, Киев, Наукова думка, 1982, стр.116). Многие штаммы рода Bacillus, видов subtilis, cereus, polymyxa обладают фунгицидной способностью, однако в известных источниках не содержится сведений о том, что какие-либо из них обладают также и устойчивостью к высокой щелочности среды рН 9-1 (алкалофильность). Были проведены исследования фунгицидных свойств и устойчивости в аммиачной среде с рН 10 разных штаммов этих бактерий из коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ). Использовали также бактерии рода Bacillus, выделенные из почв различных регионов России, а также из почв Вьетнама, Китая, Индии. Все они тестировались по отношению к тест-грибам Fusarium Culmorun и Fusarium oxysporum, являющихся основными патогенами культурных растений. С этой целью Fusarium Culmorum высевался газоном на агаризованную среду, состоящую из отвара отрубей с мелом. Одновременно методом “колодцев” в указанную среду вносилась пятисуточная культура испытуемых бацилл. Штаммы отбирались по величине зоны ингибирования (подавления) роста испытуемого тест-гриба. У перспективных штаммов определялась стабильность титров при выдерживании бацилл в 20% растворе аммиачной воды в течение одного месяца, при комнатной температуре 20oC. За 100% принималось первоначальное количество бацилл. Остаточное количество жизнеспособных клеток определяли методом высева на питательную среду (МПА) с мясо-пептонным агаром (таблица 3). Из 72 исследованных культур были отобраны штаммы (1-15), совмещающие свойства высокой устойчивости к концентрированным растворам аммиака или мочевины (20-25%) и сохраняющие фунгицидность. Бациллы, обитающие в гуминосодержащей основе (субстрате) предлагаемого состава, активно развиваются и в течение длительного времени остаются жизнеспособными, сохраняя высокое значение титра. Из таблицы 3 также видно, что бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д, Bacillus subtilis, штамм Д-606 и Bacillus polymyxa, штамм 375Д обладают наиболее выраженным ингибирующим действием по отношению к фитопатогенным грибам, сохраняя при длительном хранении жизнеспособность в условиях высоких концентраций аммиака. Количество бацилл 7,5104-7,5108 кл/г гуминосодержащей основы обеспечивает высокую продуктивность растений и позволяет сохранить жизнеспособность клеток при длительном хранении (не менее 12 месяцев). Внесение бацилл с более высокими титрами приводит к их относительно быстрому отмиранию, что объясняется эффектом автоингибирования. Более низкие титры оказывают незначительное воздействие на продуктивность растений. Бациллам, сохраняющим жизнеспособность при предельно высоких значениях рН, свойственна высокая биологическая буферность, т.е. в данном случае способность активно метаболизировать гуматы и другие потенциально активные вещества торфа, биогумуса, а также почвы. В результате чего имеет место двойное активирование (аммиачное и бактериальное), наблюдается синергетический эффект по отношению к продуктивности растений, обусловленный поступлением большого количества гуматов непосредственно из торфа, биогумуса и почвы, а также метаболизированных гуматов и потенциально активных веществ (белков, углеводов, минеральных компонентов). Существенно повышается устойчивость растений к фитопатогенам, обитающим в почве. Синергетическая эффективность компонентов питательного состава исследовалась в Ленинградской области в 1998-99 гг. Полевые опыты проводились по следующей схеме: эквивалентное количество по числу бактерий Bacillus cereus вносили в почву и перемешивали. Использовали препарат Bacillus cereus, штамм 138Д в жидкой форме (культуральная жидкость) и в виде удобрение (таблица 4). Из таблицы 4 видно, что в варианте 3 продуктивность растений под воздействием предлагаемого удобрения существенно возрастает. Бактеризованное удобрение получают следующим образом. Приготавливают смесь биогумуса, рН которого составляет 7,0-7,5, и торфа с рН 4,0-5,0. Могут быть выбраны кислые торфы, что снижает в них присутствие исходной бактериальной микрофлоры. Биогумус получают одним из известных способов, например вермикомпостированием (Вермикомпостирование – производство и применение биогумуса, Екатеринбург, Уральский НИИ сельского хозяйства, 1992) с последующим отделением биогумуса от червей. Торф и биогумус смешивают в пропорции на 100 вес. ч. торфа 10-50 вес. ч. биогумуса. Далее в смесь вносят аммиачную воду или мочевину. Аммиачная вода может быть внесена концентрацией 20-25% в количестве, соответствующем содержанию общего азота – 2,0-10,0 вес. ч. Аммиачной водой можно обработать биогумус и торф в отдельности, а затем их смешать. Возможен вариант, когда смешивание торфа и биогумуса ведут в присутствии аммиачной воды или мочевины. Мочевина так же, как и аммиачная вода, может быть внесена отдельно в биогумус или торф, а также при их смешении. Мочевину вносят в количестве, соответствующем содержанию общего азота – 2,0-10,0 вес. ч. Затем практически стерильную массу инокулируют жидкой культурой, выбранной из групп бактерий: Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa в количестве 7,5105-7,5106 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Эти бактерии совмещают свойства высокой устойчивости к концентрированным растворам аммиака или мочевины (20-25%) и сохранения фунгицидности. Количество бацилл 7,5104-7,5108 кл/г гуминосодержащей основы обеспечивает высокую продуктивность растений и позволяет сохранить жизнеспособность клеток при длительном хранении (не менее 12 месяцев). Бактерии, используемые для приготовления удобрения, отбираются из данного вида бацилл по показателю жизнеспособности спор и вегетативных клеток в количестве не менее 50% от исходного количества, при выдерживании их в аммиачной среде с рН не менее 9, в течение 1 месяца при t=28-35oС. Показатель жизнеспособности может быть и менее 50%. В этом случае количество жизнеспособных клеток при длительном хранении удобрения снижается. Таким образом получают удобрение со следующим соотношением компонентов, вес. ч: гуминосодержащая основа (Торф-100; Биогумус 10-50); аммиачная вода или мочевина с содержанием общего азота 2,0-10,0; бактериальная добавка, выбранная из групп бактерий: Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus potymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5104-7,5108 кл/г гуминосодержащей основы. Бактеризованное удобрение может включать в качестве бактериальной добавки бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д, а также бактерии Bacillus sublilis штамм Д-606 и бактерии Bacillus polymyxa, штамм 375Д. Эти бактерии обладают наиболее выраженным ингибирующим действием по отношению к фитопатогенным грибам, сохраняя при длительном хранении жизнеспособность в условиях высоких концентраций аммиака. При добавлении каждого компонента ведут перемешивание в течение 3-5 минут, например в шнековом смесителе. Бактеризованное удобрение может дополнительно содержать 4,5-7,0 вес. ч. доломитовой муки в качестве источника кальция и магния или мела, источника кальция, что влияет на повышение продуктивности растений. Каждый из этих компонентов также может быть введен на любой стадии процесса. Пример 1 К 70 кг (100 вес. ч.) торфа древесо-осокового с рН 5,5 добавляют 5 кг (7 вес. ч.) доломитовой муки и перемешивают в шнековом смесителе в течение 3-5 минут, затем 20 кг (30 вес. ч.) биогумуса и 5 л аммиачной (технической) воды с концентрацией 25%, в пересчете на общий азот – 2 вес. ч. Полученную стерильную массу инокулируют 1 литром жидкой культуры Bacillus cereus, штамм 138Д, депонированной в коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ) в количестве 7,5105 кл/г питательной основы. Показатель жизнеспособности спор и вегетативных клеток этой культуры 50% от исходного количества, при выдерживании их в аммиачной среде с рН 9 в течение 1 месяца, при t=28oС. Таким образом получают удобрение следующего состава, вес. ч.: Торф – 100 Биогумус – 30 Аммиачная вода с содержанием общего азота – 2 Бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д – 7,5105 кл/г гуминосодержащей основы Доломитовая мука – 7 Бактериальное удобрение имеет рН 10. Удобрение упаковывают в полиэтиленовые пакеты или другую герметичную тару и сохраняют при комнатной (складской) температуре. Количество жизнеспособных клеток после 10 месяцев хранения составило 7,0107 кл/г. Удобрение внесли в почву (1:4 по объему) с посевами моркови. Урожайность составила 290 ц/га. Пример 2 К 70 кг (100 вес. ч.) торфа древесо-осокового с рН 5,5 добавляют 20 кг (30 вес. ч. ) биогумуса и 5 л аммиачной (технической) воды с концентрацией 25% в пересчете на общий азот 1,9 вес. ч., перемешивают в шнековом смесителе в течение 3-5 минут. Полученную стерильную массу инокулируют 1 литром жидкой культуры Bacillus subtilis, штамм Д-606, депонированной в коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ), в количестве 10,5105 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Показатель жизнеспособности спор и вегетативных клеток этой культуры 50% при выдерживании их в аммиачной среде с рН 9 в течение 1 месяца, при t=28oС. Таким образом получают удобрение следующего состава, вес. ч.: Торф – 100 Биогумус – 30 Аммиачная вода с содержанием общего азота – 1,9 Бактерии Bacillus subtilis, штамм 606Д – 10,5105 кл/г гуминосодержащей основы Бактериальное удобрение имеет pH 10,5. Удобрение упаковывают в полиэтиленовые пакеты или другую герметичную тару и сохраняют при комнатной (складской) температуре. Количество жизнеспособных клеток после 12 месяцев хранения составило 5,0107 кл/г. Удобрение внесли в почву, в которую произвели посев капусты. Урожайность составила 440 ц/га. Пример 3 К 70 кг (100 вес. ч.) торфа древесо-осокового с рН 5,5 добавляют 35 кг (50 вес. ч. ) биогумуса и 5 л аммиачной (технической) воды с концентрацией 25% в пересчете на общий азот 10 вес. ч., перемешивают в шнековом смесителе в течение 3-5 минут. Полученную стерильную массу инокулируют 1 литром жидкой культуры Bacillus polymyxa, штамм 375Д, депонированной в коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ), в количестве 7,5106 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Показатель жизнеспособности спор и вегетативных клеток этой культуры 50% при выдерживании их в аммиачной среде с рН 9 в течение 1 месяца, при t=28oC. Таким образом получают удобрение следующего состава вес. ч. Торф – 100 Биогумус – 50 Аммиачная вода с содержанием общего азота – 10 Бактерии Bacillus subtilis, штамм 606-Д – 10,5105 кл/г гуминосодержащей основы Бактериальное удобрение имеет pH 11. Удобрение упаковывают в полиэтиленовые пакеты или другую герметичную тару и сохраняют при комнатной (складской) температуре. Количество жизнеспособных клеток после 12 месяцев хранения составило 7,0105 кл/г. Удобрение внесли в почву, в которой произвели посев свеклы. Урожайность составила 170 ц/га. Формула изобретения
Торф – 100 Биогумус – 10-50 Аммиачная вода или мочевина с содержанием общего азота – 2,0-10,0 при этом бактериальная добавка выбрана из групп бактерий: Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5104-7,5108 кл/г гуминосодержащей основы. 2. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что в качестве бактериальной добавки оно содержит бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д. 3. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что в качестве бактериальной добавки оно содержит бактерии Bacillus subtilis, штамп Д-606. 4. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что в качестве бактериальной добавки оно содержит бактерии Bacillus polymyxa, штамм 375Д. 5. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что оно дополнительно содержит 4,5-7,0 вес. ч. доломитовой муки или мела. РИСУНКИ
|
||||||||||||||||||||||||||