Патент на изобретение №2186049
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) БАКТЕРИЗОВАННОЕ УДОБРЕНИЕ
(57) Реферат: Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано при производстве почвогрунтов и удобрений на основе торфа и биогумуса. Изобретение позволяет повысить продуктивность растений и содержание жизнеспособных клеток при длительном хранении удобрения. Это достигается в бактеризованном удобрении, включающем гуминосодержащую основу из биогумуса и бактериальную добавку, обладающую фунгицидной активностью, выбранную из группы бактерий Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5 104-7,5 108 кл/г гуминосодержащей основы. Удобрение дополнительно содержит аммиачную воду или мочевину, а в качестве гуминосодержащей основы – торф. 4 з.п. ф-лы, 4 табл.
Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано при производстве почвогрунтов и удобрений на основе торфа и биогумуса. Известно бактеризованное удобрение (Авт. свид. СССР, 655694, МКИ: С 05 F 11/08, опубл. 08.04.79), включающее в качестве гуминосодержащей основы торф. Удобрение содержит также мочевину, известь, бактериальную маточную культуру АМБ и препарат Азотобактерин. Наличие в составе извести 0,2-0,3 и мочевины 0,02-0,03 вес. ч. на 100 вес. ч. торфа позволяет повысить его рН примерно до значений 6,5-7. Однако оптимальным для роста и поддержания жизнеспособности клеток Азотобактерина является значение рН 7,5. Недостаток этого удобрения заключается в том, что Азотобактерин находится в неоптимальных условиях кислотности, предопределяющих слабый рост бактерий, и неизбежно ведет к большой потере жизнеспособности клеток при длительном хранении удобрения. Кроме того, этот процесс усугубляется тем, что Азотобактерин вносится в естественные компосты, содержащие множество разнообразной микрофлоры, в т.ч. токсичной, и компост не подвергается стерилизации (пастеризации). Такой состав является удобрительной смесью, но не обладает антигрибной активностью и не снижает поражения растений почвенными фитопатогенами, т.к. бактериальная маточная культура АМБ используется для ускорения процесса компостирования инокулированного торфа, а препарат Азотобактерин выступает только как стимулятор роста растений и слабый фиксатор атмосферного азота. Известно также бактеризованное удобрение (Патент РФ 2125549, МКИ: С 05 F 11/08, опубл. 27.01.99), являющееся наиболее близким аналогом. Удобрение включает гуминосодержащую основу в виде биогумуса с рН 6,5-7,5 и микроорганизмы, обладающие фунгицидной активностью. В биогумус вносится бактериальная культура Bacillus subtilis ИМП-215 в концентрациях 1,109-1,1012 спор на 1 кг биогумуса. К недостаткам удобрения следует отнести то, что входящий в него биогумус содержит случайный и обильный набор микрофлоры и поэтому антифунгальная активность интродуцируемого штамма мала в силу его ингибирования набором этой микрофлоры. В процессе хранения при большой населенности удобрения разнородной микрофлорой происходит интенсивный расход питательных веществ, содержащихся в нем, что приводит к большим потерям интродуцируемого штамма. Кроме того, потери жизнеспособных клеток штамма происходят из-за затрудненной аэрации препарата, обусловленной увеличением плотности влажного биогумуса в процессе хранения препарата (от нескольких недель до 1-2 месяцев). При длительном хранении 8-10 месяцев и более содержание жизнеспособных клеток интродуцируемого штамма снижается столь существенно, что удобрение теряет свое первоначальное предназначение. При использовании удобрения наблюдается небольшое повышение продуктивности растений, обусловленное тем, что большая часть гуматов, содержащаяся в биогумусе, находится в неактивном состоянии и не вовлекается в обмен веществ растения. Изобретение позволяет повысить продуктивность растений за счет синергетического эффекта от двойного активирования гуминосодержащей основы, а также повысить содержание жизнеспособных клеток при длительном хранении удобрения за счет подавления жизнедеятельности микрофлоры, присутствующей в торфе и биогумусе и введения штамма, устойчивого к высокощелочной среде. Это достигается в бактеризованном удобрении, включающем гуминосодержащую основу из биогумуса и бактериальную добавку, обладающую фунгицидной активностью. Новым является то, что оно дополнительно содержит аммиачную воду или мочевину, а в качестве гуминосодержащей основы – торф, при следующем соотношении компонентов, вес. ч: Торф – 100 Биогумус – 10-50 Аммиачная вода или мочевина с содержанием общего азота – 2,0-10,0 при этом бактериальная добавка выбрана из групп бактерий Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5 104-7,5 108 кл/г гуминосодержащей основы.
Бактеризованное удобрение может включать в качестве бактериальной добавки бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д, а также бактерии Bacillus subtilis, штамм Д-606 и бактерии Bacillus polymyxa, штамм 375Д. Эти бактерии обладают наиболее выраженным ингибирующим действием по отношению к фитопатогенным грибам, сохраняя при длительном хранении жизнеспособность в условиях высоких концентраций аммиака.
Бактеризованное удобрение может дополнительно содержать 4,5-7,0 вес. ч. доломитовой муки в качестве источника кальция и магния или мела, источника кальция, что влияет на повышение продуктивности растений.
Использование в составе аммиачной воды или мочевины с содержанием общего азота 2,0-10,0 вес. ч. влияет на состояние естественной микрофлоры, содержащейся в торфе и биогумусе. Кроме того, они являются источником азота. Более высокие концентрации азота оказывают ингибирующее действие на всходы овощных культур, а более низкие несущественно влияют на рост растений.
Были проведены исследования, в результате которых определилось состояние естественной микрофлоры смеси биогумус-торф (торф 100 вес. ч. = 1 кг, биогумус 30 вес. ч. = 0,3 кг) до и после обработки ее раствором аммиака и последующего хранения при комнатной температуре в течение 12 месяцев. Для этого 1,3 кг смеси биогумуса и торфа обрабатывались технической аммиачной водой в количестве 20 г, что в пересчете на общий азот составляет 2,3 вес. ч. Затем периодически отбирали пробу и подсчитывали количество микроорганизмов методом серийного разведения.
Результаты опытов приведены в таблице 1.
Из таблицы 1 видно, что в смеси, не обработанной аммиачной водой, содержание бактерий и грибов со временем увеличивается. В смеси, обработанной аммиачной водой, к 12 месяцам хранения грибы отсутствуют, а бактерии присутствуют в незначительном количестве. Таким образом, аммиак оказывает стерилизующее действие на естественную микрофлору смеси торф-биогумус: грибы погибают полностью, а количество бактериальной флоры уменьшается в 15-20 раз. Это создает благоприятные условия для развития и сохранения вводимой (интродуцируемой) культуры бактерий при условии ее устойчивости к аммиаку и соответствующих высоких значений рН 9-11.
Кроме этого, аммиак (мочевина) активирует органическое вещество субстрата-носителя и почвы (Тишкевич А.В. Теория и практика аммонизации торфа, Минск, Наука и техника, 1972, с.170), что благоприятствует росту растений.
Наличие торфа, который является структурирующим материалом в удобрении, уменьшает его слеживаемость, обеспечивая аэрацию (обмен СО2 и О2) внесенным бактериям, что имеет решающее значение в поддержании их жизнеспособности.
В процессе определения оптимального состава гуминосодержащих веществ, которые должны служить субстратом-носителем, было установлено, что именно смесь торфа и биогумуса в соотношении вес. ч. торф 100, биогумус 10-50 является оптимальной для роста и сохранения вводимых бактерий. Предварительно торф и биогумус раздельно обрабатывали аммиачной водой с концентрацией аммиака 25%. Аммиачная вода бралась в количестве 20 г к весу торфа 1000 г, что соответствует содержанию общего азота 5,0 вес. ч. и 8 г к весу биогумуса 30 г, что соответствует содержанию общего азота 2,0 вес. ч. Исследования проводились также на смеси, составленной из 1000 г торфа и 20 г биогумуса. Аммиачная вода в этом случае бралась в количестве 14 г на общий вес смеси 1020 г, что в пересчете на общий азот составило 3,0 вес. ч.
В полученную таким образом смесь вводили культуру отобранной бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д в количестве 5,0 106 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус).
Состав выдерживался 3-12 месяцев и определялось количество жизнеспособных бактерий. рН состава составляло 10. Эта же культура вводилась в обработанные аммиаком биогумус и торф (таблица 2.)Значение рН состава при этом достигает 10-11. Проведенные исследования для разных соотношений компонентов торфа и биогумуса, показали, что наибольшее количество жизнеспособных клеток содержится в бактеризованном удобрении с соотношением компонентов, вес. ч.: торф 100, биогумус 10-50. Подобные результаты были получены в опытах с использованием мочевины и штаммов Bacillus subtilis, штамм 606Д и Bacillus polymyxa, штамм 375Д. Среди ряда микроорганизмов, подавляющих жизнедеятельность грибных и, в меньшей степени, бактериальных фитопатогенов, большая роль отводится споровым бактериям рода Bacillus. Однако состав содержит высокую концентрацию аммиака (мочевины) и соответственно значение рН 10-11, что ограничивает круг жизнеспособных в таких условиях микроорганизмов, потому что, как известно, все бактерии рода Bacillus предпочитают рН 7,0-8,0 см (Смирнов В.В. и др. Спорообразующие аэробные бактерии – продуценты биологически активных веществ, Киев, Наукова думка, 1982, стр.116). Многие штаммы рода Bacillus, видов subtilis, cereus, polymyxa обладают фунгицидной способностью, однако в известных источниках не содержится сведений о том, что какие-либо из них обладают также и устойчивостью к высокой щелочности среды рН 9-1 (алкалофильность). Были проведены исследования фунгицидных свойств и устойчивости в аммиачной среде с рН 10 разных штаммов этих бактерий из коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ). Использовали также бактерии рода Bacillus, выделенные из почв различных регионов России, а также из почв Вьетнама, Китая, Индии. Все они тестировались по отношению к тест-грибам Fusarium Culmorun и Fusarium oxysporum, являющихся основными патогенами культурных растений. С этой целью Fusarium Culmorum высевался газоном на агаризованную среду, состоящую из отвара отрубей с мелом. Одновременно методом “колодцев” в указанную среду вносилась пятисуточная культура испытуемых бацилл. Штаммы отбирались по величине зоны ингибирования (подавления) роста испытуемого тест-гриба. У перспективных штаммов определялась стабильность титров при выдерживании бацилл в 20% растворе аммиачной воды в течение одного месяца, при комнатной температуре 20oC. За 100% принималось первоначальное количество бацилл. Остаточное количество жизнеспособных клеток определяли методом высева на питательную среду (МПА) с мясо-пептонным агаром (таблица 3). Из 72 исследованных культур были отобраны штаммы (1-15), совмещающие свойства высокой устойчивости к концентрированным растворам аммиака или мочевины (20-25%) и сохраняющие фунгицидность. Бациллы, обитающие в гуминосодержащей основе (субстрате) предлагаемого состава, активно развиваются и в течение длительного времени остаются жизнеспособными, сохраняя высокое значение титра. Из таблицы 3 также видно, что бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д, Bacillus subtilis, штамм Д-606 и Bacillus polymyxa, штамм 375Д обладают наиболее выраженным ингибирующим действием по отношению к фитопатогенным грибам, сохраняя при длительном хранении жизнеспособность в условиях высоких концентраций аммиака. Количество бацилл 7,5 104-7,5 108 кл/г гуминосодержащей основы обеспечивает высокую продуктивность растений и позволяет сохранить жизнеспособность клеток при длительном хранении (не менее 12 месяцев). Внесение бацилл с более высокими титрами приводит к их относительно быстрому отмиранию, что объясняется эффектом автоингибирования. Более низкие титры оказывают незначительное воздействие на продуктивность растений.
Бациллам, сохраняющим жизнеспособность при предельно высоких значениях рН, свойственна высокая биологическая буферность, т.е. в данном случае способность активно метаболизировать гуматы и другие потенциально активные вещества торфа, биогумуса, а также почвы.
В результате чего имеет место двойное активирование (аммиачное и бактериальное), наблюдается синергетический эффект по отношению к продуктивности растений, обусловленный поступлением большого количества гуматов непосредственно из торфа, биогумуса и почвы, а также метаболизированных гуматов и потенциально активных веществ (белков, углеводов, минеральных компонентов). Существенно повышается устойчивость растений к фитопатогенам, обитающим в почве.
Синергетическая эффективность компонентов питательного состава исследовалась в Ленинградской области в 1998-99 гг. Полевые опыты проводились по следующей схеме: эквивалентное количество по числу бактерий Bacillus cereus вносили в почву и перемешивали. Использовали препарат Bacillus cereus, штамм 138Д в жидкой форме (культуральная жидкость) и в виде удобрение (таблица 4).
Из таблицы 4 видно, что в варианте 3 продуктивность растений под воздействием предлагаемого удобрения существенно возрастает.
Бактеризованное удобрение получают следующим образом.
Приготавливают смесь биогумуса, рН которого составляет 7,0-7,5, и торфа с рН 4,0-5,0. Могут быть выбраны кислые торфы, что снижает в них присутствие исходной бактериальной микрофлоры. Биогумус получают одним из известных способов, например вермикомпостированием (Вермикомпостирование – производство и применение биогумуса, Екатеринбург, Уральский НИИ сельского хозяйства, 1992) с последующим отделением биогумуса от червей. Торф и биогумус смешивают в пропорции на 100 вес. ч. торфа 10-50 вес. ч. биогумуса. Далее в смесь вносят аммиачную воду или мочевину. Аммиачная вода может быть внесена концентрацией 20-25% в количестве, соответствующем содержанию общего азота – 2,0-10,0 вес. ч.
Аммиачной водой можно обработать биогумус и торф в отдельности, а затем их смешать. Возможен вариант, когда смешивание торфа и биогумуса ведут в присутствии аммиачной воды или мочевины.
Мочевина так же, как и аммиачная вода, может быть внесена отдельно в биогумус или торф, а также при их смешении.
Мочевину вносят в количестве, соответствующем содержанию общего азота – 2,0-10,0 вес. ч.
Затем практически стерильную массу инокулируют жидкой культурой, выбранной из групп бактерий: Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa в количестве 7,5 105-7,5 106 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Эти бактерии совмещают свойства высокой устойчивости к концентрированным растворам аммиака или мочевины (20-25%) и сохранения фунгицидности.
Количество бацилл 7,5 104-7,5 108 кл/г гуминосодержащей основы обеспечивает высокую продуктивность растений и позволяет сохранить жизнеспособность клеток при длительном хранении (не менее 12 месяцев).
Бактерии, используемые для приготовления удобрения, отбираются из данного вида бацилл по показателю жизнеспособности спор и вегетативных клеток в количестве не менее 50% от исходного количества, при выдерживании их в аммиачной среде с рН не менее 9, в течение 1 месяца при t=28-35oС.
Показатель жизнеспособности может быть и менее 50%. В этом случае количество жизнеспособных клеток при длительном хранении удобрения снижается.
Таким образом получают удобрение со следующим соотношением компонентов, вес. ч: гуминосодержащая основа (Торф-100; Биогумус 10-50); аммиачная вода или мочевина с содержанием общего азота 2,0-10,0; бактериальная добавка, выбранная из групп бактерий: Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus potymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5 104-7,5 108 кл/г гуминосодержащей основы.
Бактеризованное удобрение может включать в качестве бактериальной добавки бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д, а также бактерии Bacillus sublilis штамм Д-606 и бактерии Bacillus polymyxa, штамм 375Д. Эти бактерии обладают наиболее выраженным ингибирующим действием по отношению к фитопатогенным грибам, сохраняя при длительном хранении жизнеспособность в условиях высоких концентраций аммиака.
При добавлении каждого компонента ведут перемешивание в течение 3-5 минут, например в шнековом смесителе.
Бактеризованное удобрение может дополнительно содержать 4,5-7,0 вес. ч. доломитовой муки в качестве источника кальция и магния или мела, источника кальция, что влияет на повышение продуктивности растений.
Каждый из этих компонентов также может быть введен на любой стадии процесса.
Пример 1К 70 кг (100 вес. ч.) торфа древесо-осокового с рН 5,5 добавляют 5 кг (7 вес. ч.) доломитовой муки и перемешивают в шнековом смесителе в течение 3-5 минут, затем 20 кг (30 вес. ч.) биогумуса и 5 л аммиачной (технической) воды с концентрацией 25%, в пересчете на общий азот – 2 вес. ч. Полученную стерильную массу инокулируют 1 литром жидкой культуры Bacillus cereus, штамм 138Д, депонированной в коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ) в количестве 7,5 105 кл/г питательной основы.
Показатель жизнеспособности спор и вегетативных клеток этой культуры 50% от исходного количества, при выдерживании их в аммиачной среде с рН 9 в течение 1 месяца, при t=28oС.
Таким образом получают удобрение следующего состава, вес. ч.:Торф – 100 Биогумус – 30 Аммиачная вода с содержанием общего азота – 2 Бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д – 7,5 105 кл/г гуминосодержащей основыДоломитовая мука – 7 Бактериальное удобрение имеет рН 10. Удобрение упаковывают в полиэтиленовые пакеты или другую герметичную тару и сохраняют при комнатной (складской) температуре. Количество жизнеспособных клеток после 10 месяцев хранения составило 7,0 107 кл/г. Удобрение внесли в почву (1:4 по объему) с посевами моркови. Урожайность составила 290 ц/га.
Пример 2К 70 кг (100 вес. ч.) торфа древесо-осокового с рН 5,5 добавляют 20 кг (30 вес. ч. ) биогумуса и 5 л аммиачной (технической) воды с концентрацией 25% в пересчете на общий азот 1,9 вес. ч., перемешивают в шнековом смесителе в течение 3-5 минут. Полученную стерильную массу инокулируют 1 литром жидкой культуры Bacillus subtilis, штамм Д-606, депонированной в коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ), в количестве 10,5 105 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Показатель жизнеспособности спор и вегетативных клеток этой культуры 50% при выдерживании их в аммиачной среде с рН 9 в течение 1 месяца, при t=28oС.
Таким образом получают удобрение следующего состава, вес. ч.:Торф – 100 Биогумус – 30 Аммиачная вода с содержанием общего азота – 1,9 Бактерии Bacillus subtilis, штамм 606Д – 10,5 105 кл/г гуминосодержащей основыБактериальное удобрение имеет pH 10,5. Удобрение упаковывают в полиэтиленовые пакеты или другую герметичную тару и сохраняют при комнатной (складской) температуре. Количество жизнеспособных клеток после 12 месяцев хранения составило 5,0 107 кл/г. Удобрение внесли в почву, в которую произвели посев капусты. Урожайность составила 440 ц/га.
Пример 3К 70 кг (100 вес. ч.) торфа древесо-осокового с рН 5,5 добавляют 35 кг (50 вес. ч. ) биогумуса и 5 л аммиачной (технической) воды с концентрацией 25% в пересчете на общий азот 10 вес. ч., перемешивают в шнековом смесителе в течение 3-5 минут. Полученную стерильную массу инокулируют 1 литром жидкой культуры Bacillus polymyxa, штамм 375Д, депонированной в коллекции Всероссийского научно-исследовательского института сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ), в количестве 7,5 106 кл/г гуминосодержащей основы (торф и биогумус). Показатель жизнеспособности спор и вегетативных клеток этой культуры 50% при выдерживании их в аммиачной среде с рН 9 в течение 1 месяца, при t=28oC.
Таким образом получают удобрение следующего состава вес. ч.Торф – 100 Биогумус – 50 Аммиачная вода с содержанием общего азота – 10 Бактерии Bacillus subtilis, штамм 606-Д – 10,5 105 кл/г гуминосодержащей основыБактериальное удобрение имеет pH 11. Удобрение упаковывают в полиэтиленовые пакеты или другую герметичную тару и сохраняют при комнатной (складской) температуре. Количество жизнеспособных клеток после 12 месяцев хранения составило 7,0 105 кл/г. Удобрение внесли в почву, в которой произвели посев свеклы. Урожайность составила 170 ц/га.
Формула изобретения
Торф – 100 Биогумус – 10-50 Аммиачная вода или мочевина с содержанием общего азота – 2,0-10,0 при этом бактериальная добавка выбрана из групп бактерий: Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus polymyxa с сохранением жизнеспособности в аммиачной среде с рН не менее 9, в количестве 7,5 104-7,5 108 кл/г гуминосодержащей основы.
2. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что в качестве бактериальной добавки оно содержит бактерии Bacillus cereus, штамм 138Д.
3. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что в качестве бактериальной добавки оно содержит бактерии Bacillus subtilis, штамп Д-606.
4. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что в качестве бактериальной добавки оно содержит бактерии Bacillus polymyxa, штамм 375Д.
5. Бактеризованное удобрение по п. 1, отличающееся тем, что оно дополнительно содержит 4,5-7,0 вес. ч. доломитовой муки или мела.
РИСУНКИ
|
||||||||||||||||||||||||||

104-7,5