Патент на изобретение №2177993
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) ЭКСПРЕСС-СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ КОНИДИЙ ГРИБОВ
(57) Реферат: Изобретение относится к биотехнологии, в частности к экспресс-способу определения жизнеспособности конидий грибов Ascomycota, используемых в качестве посевного материала. Сущность способа состоит в том, что перед посевом конидии смачивают эталоном, среду готовят на основе цитратно-фосфатного буфера с добавлением агара, в качестве источника углерода используют глюкозу, азота – пептон. Питательную среду наносят на предметное стекло, культивирование осуществляют во влажной камере, контроль за стадиями прорастания конидий проводят путем микроскопирования в световом микроскопе, при этом перед микроскопированием на поверхность среды помещают окулярную сетку. Способ позволяет выявить значительно больше жизнеспособных конидий, ускорить процесс прорастания конидий на 1,5-2 ч. 2 з. п. ф-лы. Способ относится к области биотехнологии, в частности к установлению жизнеспособности (всхожести) конидий грибов, используемых в качестве посевного материала. В последние годы все большее внимание уделяется развитию биотехнологических производств, которые дают возможность быстрее и дешевле экологически чистым способом получать лекарственные препараты, пищевые добавки, заменители пищевого белка и даже нетканые материалы. Основными продуцентами большинства современных биотехнологических производств являются мицелиальные грибы, относящиеся к Neomycota и Eomycota. В таких производствах используют в качестве посевного спорового материала конидии и спорангиоспоры. Известно, что эти споры находятся в особом состоянии, получившем название экзогенного покоя, когда большая часть метаболических процессов находится в стадии торможения и не происходит роста и пролиферации клеток. В таком “спящем” состоянии грибные споры могут находиться достаточно долгое время без потери жизнеспособности. Однако при нарушении условий хранения часть спор может потерять всхожесть и поэтому перед внесением спорового материала в ферментер необходимо провести проверку на его способность к прорастанию. Такая процедура является очень важным звеном в любом биотехнологическом производстве, например для получения лимонной кислоты с помощью аскомицета Aspergillus niger. В данном случае достаточно часто наблюдается почти 100% потеря всхожести конидий, которая иногда сопровождается появлением “кислого” запаха. Следует также особо отметить, что процесс прорастания конидий является достаточно мало изученным биологическим феноменом, а биотехнологические производства нуждаются не только в корректном и достоверном способе определения жизнеспособности спорового посевного материала, но и в экспресс-способе, методически простом, не требующем сложного специализированного оборудования и дорогостоящих реактивов. Известно несколько способов установления жизнеспособности посевного материала, которые используются в микробиологических производствах одновременно как для определения жизнеспособности, так и для обнаружения инфекции [1-6] . Наиболее распространены способы определения жизнеспособности на жидких средах [1] , либо на твердой (агаризованной) среде путем рассева спор на чашках Петри [2,3] . Для обнаружения жизнеспособных микроорганизмов, в том числе патогенных, используют такой признак, как качественное и количественное изменение состава питательных сред, например потребление источников углерода и азота, образование токсинов, пигментов и др. [4] . Для целей обнаружения жизнеспособных микроорганизмов используют также автоматический анализ микробиологических объектов (анализатор микрообъектов АБ-3) или автоматический цитоспектрофлуориметр с применением люминесцентного метода окрашивания живых клеток [5] . Определение жизнеспособности зооспорангиев патогенных грибов определяют биологическим способом, т. е. путем высаживания восприимчивых к раку сортов картофеля в почву, содержащую зооспорангии патогена, либо путем окрашивания зооспорангиев 0,5% раствором трифенилтетразолхлорида при 35oС, или 0,5-0,7% раствором нитросинего тетразолия при 35-36oС в присутствии гомогенатов гриба Aspergillus fumigatus или A. niger [6] . Используют также биохимический метод обнаружения жизнеспособных спор грибов по содержанию в них АТФ [7] . Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту является способ определения жизнеспособности конидий мицелиального гриба Cunninghamella japonica [1] , согласно которому споры в количестве 2-5 ![]() Пример 1 Определяют жизнеспособность конидий Aspergillus niger ВКПМ F-790. С этой целью готовят суспензию конидий (СК): 20 мг конидий смачивают 0,05 мл этанола и добавляют 10 мл воды. На поверхность предметного стекла наносят тонким слоем 2 мл расплавленной агаризованной среды, содержащей 0,1% пептона и 0,15% глюкозы в фосфатно-цитратном буфере с рН – 4,0. После застывания агара на поверхность среды наносят 1 каплю (0,02-0,04 мл) СК, которую равномерно распределяют стеклянной палочкой по поверхности среды. После засева предметное стекло помещают в чашку Петри на фильтровальную бумагу, смоченную 0,5 мл воды. Чашку Петри помещают в термостат при 32oС. Контроль за процессом прорастания осуществляют микроскопически, в случае необходимости подсчитывают количество проросших конидий, для этого на поверхность агаровой среды помещают окулярную сетку, считают конидии в 5-8 квадратах (в сумме 600 конидий) и вычисляют долю проросших конидий. При микроскопическом контроле в световом микроскопе уже через 2 ч обнаруживают на 30% больше набухших конидий (стадия I), чем по методу прототипа, а через 6 ч (стадия II) – на 15% больше проросших конидий. Пример 2 То же, что и в примере 1, но в качестве питательной среды используют среду следующего состава (г/л): сахароза – 30,0; КН2РO4 – 10,0; MgSO4 ![]() То же, что и в примере 1, но в качестве питательной среды используют 0,3% пептона и 0,5% глюкозы в фосфатно-цитратном буфере с рН 5,1. При микроскопическом контроле в световом микроскопе уже через 2 часа обнаруживают на 11% больше набухших конидий (стадия I), чем по методу прототипа, а через 6 ч (стадия II) – на 13% больше проросших конидий. Пример 4 То же, что в примере 1, но в качестве продуцента используют Penicillium lanosum BKM F-1956. При микроскопическом контроле в световом микроскопе уже через 2 ч обнаруживают на 25% больше набухших конидий (стадия I), чем по методу прототипа, а через 6 ч (стадия II) – на 14% больше проросших конидий. Пример 5. То же, что и в примере 3, но в качестве продуцента используют Aspergillus niger BKM F-33. При микроскопическом контроле в световом микроскопе уже через 2 ч обнаруживают на 21% больше набухших конидий (стадия I), чем по методу прототипа, а через 6 ч (стадия II) – на 13% больше проросших конидий. Таким образом, предлагаемый способ позволяет выявить значительно больше, практически на 30% (см. пример 1), жизнеспособных конидий, не требует применения фазово-контрастной микроскопии, методически более прост (не нуждается в стерильном отборе проб, применении качалок), более точен, так как на его результат не влияет процесс агрегации (слипания) конидий, процесс прорастания ускоряется на 1,5-2 ч. ЛИТЕРАТУРА 4. Принципы быстрого обнаружения патогенных микроорганизмов и вирусов. 1969. Саратов. С. 39-72. Формула изобретения
PC4A – Регистрация договора об уступке патента Российской Федерации на изобретение
Прежний патентообладатель:
(73) Патентообладатель:
Дата и номер государственной регистрации перехода исключительного права: 19.05.2006 № РД0008897
Извещение опубликовано: 10.07.2006 БИ: 19/2006
PC4A Государственная регистрация перехода исключительного права без заключения договора
(73) Патентообладатель(и):
(73) Патентообладатель:
Дата и номер государственной регистрации перехода исключительного права: 09.06.2010 № РП0000823
Извещение опубликовано: 20.07.2010 БИ: 20/2010
|
||||||||||||||||||||||||||