Патент на изобретение №2393481

(54) СПОСОБ ПОДАВЛЕНИЯ ИММУННЫХ РЕАКЦИЙ

(57) Реферат:

Изобретение относится к области биологии и медицины. Предложен способ подавления иммунологических реакций иммунокомпетентных клеток путем обработки in vitro смесью неметаболизированного циклофосфамида и его активных метаболитов в соотношении 1000:0,75-1000:3. При этом степень подавления иммунных реакций обрабатываемых клеток достоверно возрастает в 1,4-2,2 раза. В основе метода лежит установленное впервые свойство неметаболизированного циклофосфамида усиливать иммунодепрессивное действие своих активных метаболитов. Обоснование способа было получено в опытах с использованием системы адоптивного сингенного переноса иммунокомпетентных клеток и в экспериментах по изучению пролиферации Т-лимфоцитов селезенки мышей. Способ может быть использован при обработке клеток костного мозга перед аутотрансплантацией при лечении лейкозов, при экстракорпоральной фармакотерапии и при локальной химиотерапии рака. 3 табл.

Изобретение относится к медицине и может быть использовано при обработке клеток костного мозга перед аутотрансплантацией при лечении лейкозов, при экстракорпоральной фармакотерапии и при локальной химиотерапии рака.

Предпосылкой для изобретения послужили наши ранние работы, где мы анализировали возможные причины контрастных межлинейных различий у мышей в чувствительности к иммунодепрессивному действию ЦФ in vivo (Л.Ю.Телегин, Бюл. эксперим. биол. и мед., 1979, 87, 250-252; L.A.Pevnitsky, L.Yu.Telegin, G.F.Zhimov et al., Int. J. Immunopharmacol., 1985, 7, 875-880; Л.А.Певницкий, В.М.Писарев, Л.Ю.Телегин и др. Вестник РАМН, 1992, 4, 52-55).

Прототипом для проведения нашего исследования послужила работа (Р.R.Kohn, N.Е.Sladek, Immunopharmacol. Immunotoxicol., 1988, 10, 387-398), где смесь мышиных клеток селезенки и костного мозга с целью профилактики возникновения такого осложнения, как реакция “трансплантат-против хозяина” (РТПХ), обрабатывали МАФ в концентрации 160 микромоль и затем вводили летально облученным аллогенным мышам-реципиентам. Продолжительность жизни без признаков РТПХ мышей-реципиентов незначительно возрастала, но при этом наблюдалась “приживляемость” (появление в кровотоке реципиентов) донорских клеток. Увеличение концентрации МАФ значительно увеличило выживаемость реципиентов, однако при этом у них существенно снизилось содержание донорских клеток в крови.

Целью изобретения является разработка нового способа подавления иммунных реакций иммунокомпетентных клеток путем экстракорпоральной обработки их иммунодепрессантами. Данная цель достигается комбинированной обработкой клеток ЦФ и МАФ. Принципиально новым является добавление циклофосфамида при обработке клеток мафосфамидом. Такая комбинация предложена впервые и в литературе не описана.

Техническая сущность изобретения заключается в следующем. В основе изобретения лежит установленное впервые свойство неметаболизированного циклофосфамида усиливать иммунодепрессивное действие своих активных метаболитов. Обоснование способа было получено в опытах с использованием системы адоптивного сингенного переноса иммунокомпетентных клеток и в экспериментах по изучению пролиферации Т-лимфоцитов селезенки мышей. Спленоциты мышей CBA/CaLacY инкубировали с циклофосфамидом и мафосфамидом (источник активных метаболитов циклофосфамида) как по отдельности, так и в комбинации. Было обнаружено, что циклофосфамид сам по себе не влиял на иммунный ответ тест-клеток. Обработка клеток мафосфамидом снизила их иммунный ответ до 46% от контрольного уровня. Добавление циклофосфамида к мафосфамиду привело к более чем двукратному увеличению иммуносупрессивного эффекта мафосфамида (21% от контроля). Аналогичные результаты были получены в опытах по исследованию антипролиферативного действия препаратов на Т-клетки мышей C57BL/6J и мутагенного действия ЦФ и МАФ на лимфоциты периферической крови человека.

⁸ в 1 мл. Затем спленоциты трижды отмывали центрифугированием и вводили внутривенно по 50 млн вместе с 4×10⁸ эритроцитов барана сингенным мышам-реципиентам, иммунореактивность которых была подавлена предварительным введением ЦФ в дозе 200 мг/кг за 3-4 ч до клеточного переноса. Такая обработка мышей-реципиентов эквивалентна сублетальному облучению и обеспечивает их иммунологическую ареактивность до 6 дней, что позволяет в течение этого срока оценивать иммунный ответ донорских клеток, обработанных различными агентами (Г.К.Баймуканова, Н.Н.Смирнова, Бюл. эксперим. биол. мед. 1977, 84, 336-339). Через 5 дней после клеточного переноса в селезенке реципиентов определяли содержание IgM-антителообразующих клеток (АОК) по методу Ерне. Результаты опытов представлены в табл. 1. Как видно из таблицы, обработка ЦФ практически не влияла на иммунный ответ спленоцитов, МАФ на 54% ингибировал иммунный ответ тест-клеток (Р<0,01). Добавление ЦФ достоверно, более чем в 2 раза усиливало иммунодепрессивное действие МАФ.

Пример 2. Поскольку одной из основных мишеней действия ЦФ являются Т-лимфоциты (Thistlethwaite F. С., Elkord E., Griffiths R. W. et al., Cancer Immunol. Immunother., 2008, 57, 623-634), в следующей серии опытов исследовали предположение, усилится ли подавление пролиферации Т-клеток селезенки мышей линии C57BL/6J при комбинированном воздействии ЦФ и его активных метаболитов. Для оценки пролиферации Т-клеток использовали планшеты с адсорбированными антителами против CDS-рецептора Т-клеток (Biocoat anti-mouse CD3 T-cell activation plate, Becton Dickmson, Labware, Bedford, MA, США). Поскольку полноценная активация Т-клеток посредством антител к CD3 нуждается в дополнительных стимулах, опосредуемых молекулами межклеточного взаимодействия, в качестве отвечающих клеток использовали неочищенные спленоциты, содержащие вспомогательные клетки, которые экспрессируют CD28 и другие костимулирующие молекулы. После лизиса эритроцитов раствором NH₄CL спленоциты отмывали дважды в изотоническом солевом растворе, забуференном фосфатами, и инкубировали при концентрации 10⁷ клеток в 1 мл с ЦФ (1000 мкг/мл), МАФ (разные концентрации) или в комбинации в течение 1 часа при 37°С. Контрольные клетки инкубировали без препаратов. Инкубацию прекращали добавлением холодной среды, содержащей 10% сыворотки эмбриона коровы, трижды отмывали и переносили в планшеты с антителами к CD3. Клетки инкубировали 72 часа в объеме 200 мкл. За 8 часов до окончания культивирования в лунки добавляли 1 мкКu ³H-тимидина. Результаты опытов, представленные в табл.2, свидетельствуют о том, что при совместном действии ЦФ и МАФ наблюдается наиболее сильное подавление пролиферации Т-клеток. Как и при исследовании иммуносупрессивного действия препаратов в системе адоптивного переноса, ЦФ сам по себе не оказывал антипролиферативного действия на Т-клетки.

Пример 3. Поскольку биологическое действие ЦФ в организме и, в частности, его иммунодепрессивный эффект обусловлены алкилированием ДНК, мы изучали мутагенное действие (индукцию хромосомных аберраций) комбинации ЦФ и МАФ на лимфоциты периферической крови человека.

Условия культивирования клеток, полученных от здорового донора, приготовление и окраска препаратов (рутинное окрашивание) и их микроскопический анализ были общепринятыми (Hungerford D. A., Stain TechnoL, 1965, 40, 333-338). Культуру клеток, содержащихся в среде RPMI-1640 (Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов, Москва, Россия) с добавлением эмбриональной телячьей сыворотки (Biotest, Германия), в течение 1 часа при 37°С обрабатывали ЦФ и разными концентрациями МАФ, которые вводили на стадии G_o клеточного цикла (до введения фитогемагглютинина, ФГА, ПанЭко, Москва, Россия). Далее клетки дважды отмывали и заменяли среду культивирования на новую, содержащую ФГА. Затем культуру фиксировали на 52 часу. За 2 часа до фиксации добавляли колхицин (Calbiochem, Великобритания) в конечной концентрации 0,5 мкг/мл. Результаты опытов представлены в табл. 3. Как видно из таблицы, добавление ЦФ достоверно (по критерию ²) усиливает мутагенное действие МАФ, особенно это выражено при использовании концентрации МАФ, равной 3 мкг/мл (более чем в 2 раза). ЦФ per se практически не оказывал мутагенного влияния.

Таблица 1
Влияние циклофосфамида, мафосфамида и их комбинации на иммунный ответ нормальных клеток селезенки мышей CBA/CaLacY
Группа	Препараты	Число АОК в селезенке	Р
1	МАФ+ЦФ	21 (13÷32)	P1,2<0,01
		n=12
2	МАФ	46 (33÷64)	Р2,3<0,01
		n=12
3	ЦФ	98 (81÷118)	Р3,4=0,643
		n=12
4	Контроль	100 (85÷117)	–
		n=11
Примечание. Представлены средние геометрические числа антителообразующих клеток в селезенке мышей, выраженные в процентах к контролю, и 95% доверительные интервалы (в скобках); n – число животных в группе.

Таблица 2
Чувствительность Т-клеток селезенки мышей C57BL/6J к циклофосфамиду и мафосфамиду
Номер, название группы	СD3-ответ, % к контролю	Р
Группа 1 “контроль”	100 (91÷110) n=12	P1,2=0,661
Группа 2 “Цф”	103
	(92÷114)
	n=12
Группа 3	87
МАФ (0,75мкг/мл)	(78÷95)	P1,3<0,05
	n=12
Группа 4	64
“МАФ (1,5 мкг/мл)”	(56÷71)	P1,4<0,0001
	n=12
Группа 5	45
“МАФ (3,0 мкг/мл)”	(38÷53)	P1,5<0,0001
	n=12
Группа 6	62
“МАФ (0,75 мкг/мл) +ЦФ”	(52-72)	Р3,6<0,001
	n=12
Группа 7	44
“МАФ (1,5 мкг/мл) + ЦФ”	(39÷49)	P4,7<0,0001
	n=12
Группа 8	33
“MAФ (3,0 мкг/мл)+ ЦФ”	(23÷43)	Р5,8<0,05
	n=12
Примечание. Представлены средние значения числа имп/мин, выраженные в процентах к контролю, и (в скобках) 95% доверительные интервалы; n – число животных в группе.

Формула изобретения

Способ подавления иммунных реакций клеток селезенки в условиях их культивирования в присутствии иммунодепрессантов, отличающийся тем, что в качестве иммунодепрессантов используют циклофосфамид и мафосфамид, взятые в соотношении их концентраций 1000:(0,75-3,0).