Патент на изобретение №2366458
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
(54) АССОЦИИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ РОТАВИРУСНОЙ И КОРОНАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИЙ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ЭМУЛЬСИОННАЯ ИНАКТИВИРОВАННАЯ
(57) Реферат:
Изобретение относится к ветеринарной вирусологии и биотехнологии. Предложенная вакцина содержит смесь авирулентных очищенных антигенов из штамма
Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и касается ассоциированной вакцины для специфической профилактики желудочно-кишечных заболеваний крупного рогатого скота (КРС), преимущественно телят, обусловленных возбудителями ротавирусной и коронавирусной инфекций КРС. В структуре заболеваний телят в ранний постнатальный период превалирующее место занимают нарушения функции пищеварительной системы, клинически проявляющиеся диареей, обуславливающей развитие выраженной дегидратации, токсемии, иммунодефицитов, нарушения обмена веществ. Этиопатогенетически поражения органов пищеварения отмечаются значительным полиморфизмом, включающим широкий спектр различных факторов, в том числе генетических, физиологических, санитарно-гигиенических и инфекционных. Массовые нарушения функции пищеварения, клинически проявляющиеся диареями, регистрируются у 70-100% новорожденных телят уже к концу первых суток после рождения. Больные телята отказываются от молозива, мало подвижны, быстро наступает обезвоживание, интоксикация и резко понижается тонус. Гибель новорожденных телят, как правило, наступает на 2-5-й или 7-10-й дни. Обычно погибает от 15 до 55% новорожденных телят (1, 2, 3). Основной причиной гастроэнтеритов новорожденных телят являются инфекционные агенты, в том числе вирусы, бактерии, простейшие и грибы, вирулентность которых повышается на фоне различных неблагоприятных условий содержания и кормления. Возбудители инфекционных заболеваний попадают в организм обычно в первый день жизни телят (4, 5). Принято считать, что вирусы являются пусковым механизмом для развития патологии кишечника. При диареях новорожденных телят выделяют преимущественно ротавирус и коронавирус. Эти вирусы играют ведущую роль в этиологии желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят, особенно в крупных животноводческих хозяйствах (5, 6, 7). Ротавирусная инфекция КРС широко распространена во всех странах мира и наносит большой экономический ущерб промышленному животноводству за счет высокого уровня заболеваемости телят, смертности в результате диареи, потери массы тела животных и снижения сопротивляемости другим инфекциям. Ротавирусы КРС характеризуются значительным антигенным полиморфизмом и нестабильностью антигенной структуры. Сложная структура генома, в том числе его фрагментарность, и относительная устойчивость к воздействию разнообразных факторов обусловливают постоянную возможность модификации его антигенной структуры и энзоотическое течение заболевания в хозяйствах с неблагополучными условиями содержания животных. Для специфической профилактики ротавирусного энтерита применяют живые и инактивированные вакцины, которыми прививают глубокостельных коров. При этом практическое значение для профилактики ротавирусной диареи новорожденных телят имеют колостральный иммунитет, обусловленный поступлением с молозивом в организм новорожденных телят специфических антител, нейтрализующих возбудитель в просвете тонкого кишечника, а также иммунокомпетентных клеток и других протективных факторов Коронавирусная инфекция у КРС проявляется в виде коронавирусной диареи новорожденных телят, коронавирусной зимней дизентерии взрослого КРС и коронавирусной респираторной инфекции. Чрезвычайно широкое распространение, тенденция вызывать длительную персистенцию, относительная устойчивость к воздействию разнообразных факторов обусловливают энзоотическое течение болезни в хозяйствах с неблагополучными условиями содержания и кормления. Стационарность болезни поддерживается за счет длительной персистенции возбудителя коронавирусной инфекции в организме животных-реконвалесцентов. Важными условиями успешной борьбы с вышеуказанными заболеваниями являются их своевременная и правильная диагностика и проведение специфической профилактики, для которой применяются живые и инактивированные вакцины как в виде моно-, так и ассоциированных препаратов (8, 9, 10). Преимущество живых вакцин из-за технологичности в производстве и простоты при применении не вызывает сомнений. Однако иммунная реакция у животных при их введении не всегда стабильна и в ряде случаев вызывает осложнения после вакцинации: вакцина может вызвать повышенную реактогенность, иммуносупрессию, а иногда и гибель до 2% животных при вакцинации в зависимости от условий содержания и наличия коинфекций, проблемы воспроизводства, длительную персистенцию и выделение вакцинного вируса во внешнюю среду. По этой причине они не нашли широкого применения. Для специфической профилактики указанных заболеваний используют инактивированные вакцины как сорбированные, так и эмульсионные. Известна вакцина против ротавирусной инфекции КРС, содержащая в качестве активного вещества авирулентный очищенный антигенный материал из штамма
Известна вакцина против коронавирусной инфекции КРС сорбированная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса КРС, полученного в культуре клеток животного происхождения, взятой из группы, состоящей из культуры клеток MDBK, из культуры клеток Таурус-1, из культуры клеток КСТ и из культуры клеток Vero, и в качестве целевой добавки адъювант-сорбент ГОА в эффективном соотношении (12). Недостатки моновалентных инактивированных вакцин заключаются в том, что они стимулируют образование иммунитета у животных только к одной инфекции, требуют проведения профилактических обработок против каждой инфекции в отдельности, что сказывается на затратах труда, увеличивают сроки формирования иммунитета у животных, способствует возникновению стрессовых явлений и осложнений. Указанные недостатки частично устранены созданием ассоциированных вакцин, содержащих отдельно или в сочетании возбудителей ротавирусной и коронавирусной инфекций КРС различных штаммов. В ряде случаев в состав известных вакцин, особенно предназначенных для защиты телят, включают антигены возбудителей, вызывающих вторичные инфекции. Известна ассоциированная вакцина против энтеральной инфекции новорожденных телят эмульсионная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма ТМ-91 (CAPM V-279) ротавируса, из штамма BCV 9 (CAPM V-280) коронавируса и из штаммов 3935/1 (CAPM 6233), 4804 (CAPM 6234) и 6304 (CAPM 6235) бактерий E.coli КРС, полученных в чувствительных биологических системах, и в качестве целевой добавки масляный адъювант в эффективном соотношении (13). Известна ассоциированная вакцина против вирусной диареи – болезни слизистых (ВД-БС), рота- и коронавирусной инфекций и эшерихиоза КРС эмульсионная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма VDV-Oregon-C24 V (CAPM V-293) вируса ВД-БС, из штамма ТМ-91 (CAPM V-279) ротавируса, из штамма BCV-9 (CAPM V-280) коронавируса и из штаммов 3935/1 (CAPM 6233), 4804 (CAPM 6234) и 6304 (CAPM 6235) бактерий E.coli КРС, полученных в чувствительных биологических системах, и в качестве целевой добавки масляный адъювант в эффективных соотношениях (14). Известна ассоциированная вакцина против инфекционного ринотрахеита (ИРТ), рота- и коронавирусной инфекций и эшерихиоза КРС эмульсионная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма IBR-BK-5-PTOB-8 INRV Известна ассоциированная вакцина против парагриппа-3 (ПГ-3), рота- и коронавирусной инфекций и эшерихиоза КРС эмульсионная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма РI-3/T1/11 V-30 вируса ПГ-3 КРС, из штамма ТМ-91 (CAPM V-279) ротавируса, из штамма BCV-9 (CAPM V-280) коронавируса и из штаммов 3935/1 (CAPM 6233), 4808 (CAPM 6234) и 6304 (CAPM 6235) бактерий E.coli КРС, полученных в чувствительных биологических системах, и в качестве целевой добавки масляный адъювант в эффективных соотношениях (16). Известна ассоциированная вакцина против рота-, корона-, герпесвирусной и эшерихиозной диарей новорожденных телят сорбированная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма «III-1» Bovine rotavirus, из штамма «СМ-1» Bovine coronavirus, из штамма «ТКА-ВИЭВ-В 2» Bovine Herpesvirus и из штаммов бактерий E.coli, содержащих адгезины К99 и А20, и в качестве целевой добавки адъювант-сорбент ГОА в эффективных соотношениях (17). Известна ассоциированная вакцина против рота- и коронавирусной инфекций, эшерихиоза и клостридиоза КРС эмульсионная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штаммов Cody 81-4,10 В223 типа G и В 641 ротавируса КРС, штамма Mebus (АТСС Известна ассоциированная вакцина против ИРТ, ПГ-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота- и коронавирусной болезни телят «КОМБОВАК» сорбированная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из 6 (шести) производственных штаммов вирусов – возбудителей: ИРТ, ПГ-3, ВД-БС, респираторно-синцитиальной, рота- и коронавирусной болезни KPC, – полученных в чувствительных биологических системах, и в качестве целевой добавки адъювант-сорбент ГОА в эффективных соотношениях (19). Известна ассоциированная вакцина против вирусных пневмогастроэнтеритов КРС и телят сорбированная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штаммов В-25 и ТК-А вируса ИРТ KPC, из штаммов BD-N и BD-R вируса ВД-БС KPC, из штаммов В-19 и ПТК-45/86 вируса ПГ-3 KPC, из штаммов КВ-90 и К-22 коронавируса KPC и из штаммов PC-89 и PC-71 возбудителя респираторно-синцитиальной инфекции KPC, полученных в чувствительных биологических системах, и в качестве целевой добавки адъювант-сорбент ГОА в эффективных соотношениях (20). Известен также способ количественной оценки вируссодержащих суспензий с помощью электронной микроскопии, возникший как результат многолетних опытов по электронно-микроскопическому контролю вирусных препаратов и сопоставлению его данных с показателями биологических тестов, например титром инфекционности вируса (21). Авторами данного способа установлена зависимость между титром инфекционности нативных суспензий вируса ящура и количеством физических вирусных частиц, наблюдаемых под электронным микроскопом, что послужило основанием для определения общей концентрации вирусных частиц в единице объема суспензии (степень накопления вирусных частиц в определенном объеме жидкости). Для определения общей концентрации (N) вирусных частиц в единице объема анализируемой суспензии на экране электронного микроскопа площадью S2 подсчитывают число одновременно наблюдаемых частиц n. По известному инструментальному увеличению электронного микроскопа (М) определяют размер участка пленки-подложки S1, соответствующего полезной площади экрана:
При нанесении вирусных препаратов на пленки-подложки концентрация вирусных частиц n на данном участке S1 соответствует суммарному количеству адсорбированных частиц и частиц, осажденных на подложку при испарении остаточной жидкости. Следовательно, наблюдаемое одновременно на экране число частиц распределяется в микрообъеме, равном: v=S1·I, где: I – толщина остаточного слоя жидкости на подложке (мм). В определяемом объеме вируссодержащей суспензии число частиц равно:
после замены значений v и S1:
V – объем анализируемой суспензии (1 см3); N – среднее арифметическое ряда значений числа частиц, просчитанных с экрана электронного микроскопа или экспонированных фотопластинок. Толщину остаточного слоя I на подложке измеряют предварительно охлажденным микрометром после замораживания жидкости на подложке в парах жидкого азота. Она составляет 0,03-0,04 мм и ее принимают как постоянную величину. Электронно-микроскопическое определение концентрации физических вирусных частиц позволяет не только определять количественную характеристику вируса в анализируемых суспензиях, но и одновременно оценивать морфологическое состояние исследуемых вирусных частиц. Указанный способ оказался универсальным и пригодным для определения количественной характеристики различных вирусов в исследуемых жидкостях. Наиболее близкой к предлагаемому изобретению по совокупности существенных признаков является ассоциированная вакцина против рота- и коронавирусных инфекций KPC эмульсионная инактивированная, содержащая в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма ТМ-91 (CAMP V-279) ротавируса KPC, полученного в культуре клеток почки теленка MDBK с инфекционной активностью от 103 до 105 ТЦД50, и из штамма BCV 9 (CAMP V-280) коронавируса KPC, полученного в культуре клеток MDBK с гемагглютинирующей активностью (ГА-активностью) 1:256-1:512, и в качестве целевой добавки масляный адъювант в эффективных соотношениях (13). Общим существенным недостатком известных ассоциированных вакцин, в том числе вакцины-прототипа, предназначенных для профилактики рота- и коронавирусной инфекций KPC различных половозрастных групп, является их недостаточно высокая эффективность вследствие: 1) неполноценности (неполноты) антигенного состава входящих в них ингредиентов и сложных взаимодействий антигенов, из которых они изготовлены; 2) узости антигенного спектра действия используемых штаммов; 3) низкой иммуногенной активности препаратов. Причиной этого явления может быть использование для инактивации вирусов формалина, вызывающего деструктивные изменения вирусных белков. Поэтому проблема создания ассоциированной вакцины против рота- и коронавирусной инфекций KPC, преимущественно новорожденных телят, продолжает оставаться актуальной и является основным направлением исследований по ее совершенствованию. Задача, на решение которой направлено настоящее изобретение, заключается в получении ассоциированной вакцины против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионной инактивированной, создающей эффективную защиту восприимчивых животных различных половозрастных групп против возбудителей рота- и коронавирусной инфекций KPC, циркулирующих на территории Российской Федерации. Технический результат от использования предлагаемого изобретения заключается в расширении арсенала высокоиммуногенных, безвредных и ареактогенных ассоциированных вакцин против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионных инактивированных, способных защитить поголовье KPC различных половозрастных групп от возбудителей рота- и коронавирусной инфекций KPC, циркулирующих на территории России. Указанный технический результат достигнут созданием ассоциированной вакцины против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионной инактивированной, охарактеризованной следующей совокупностью признаков. Согласно изобретению предлагаемая вакцина содержит в качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма Предлагаемое изобретение включает следующую совокупность существенных признаков, обеспечивающих получение технического результата во всех случаях, на которые испрашивается правовая охрана: 1. Ассоциированная вакцина против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионная инактивированная. 2. Активное вещество. 3. В качестве активного вещества смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма 4. Целевая добавка. 5. В качестве целевой добавки масляный адъювант. Признаками изобретения, характеризующими предлагаемую вакцину и совпадающими с признаками прототипа, в том числе родовое понятие, отражающее назначение, являются: 1. Ассоциированная вакцина против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионная инактивированная. 2. Активное вещество. 3. Целевая добавка. По сравнению с вакциной-прототипом существенные отличительные признаки предлагаемой вакцины заключаются в том, что в качестве активного вещества она содержит смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма Предлагаемое изобретение характеризуется другими отличительными признаками, выражающими конкретные формы выполнения или особые условия его использования: 1. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 2. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 3. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 4. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 5. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 6. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 7. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток животного происхождения, взятой из группы, состоящей из культуры клеток MDBK, из культуры клеток почки теленка Таурус-1, из культуры клеток KCT и из культуры клеток Vero, в эффективном количестве. 8. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 108 вирусных частиц/см3 и активностью в реакции гемагглютинации (РГА) не менее 7,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 9. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Таурус-1 со степенью накопления не менее 109 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 9,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 10. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток KCT со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 11. Авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Vero со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 12. Масляный адъювант в количестве не менее 70,0 мас.% 13. Смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма
Входящие в предлагаемую вакцину штаммы вирусов известны и являются производственными при изготовлении моновакцин (22, 23). В результате проведенных исследований авторами установлено, что между антигенами, входящими в состав предлагаемой вакцины, отсутствует конкуренция. Авторами обнаружено также явление синергизма при соединении указанных антигенов в предлагаемой вакцине, что позволило снизить их количественное содержание в препарате при сохранении такой же напряженности и длительности иммунитета у вакцинированных животных, как и при использовании для иммунизации соответствующих монопрепаратов. Дополнительный технический результат от использования предлагаемого изобретения достигается за счет того, что для инактивации вируссодержащих материалов используют аминоэтилэтиленимин (АЭЭИ), что позволяет значительно снизить трудо- и энергозатраты на изготовление вакцины и повысить качество антигенных материалов. Дополнительный технический результат от использования предлагаемого изобретения в части повышения антигенной и иммуногенной активности целевого препарата достигается также за счет использования в его составе масляного адъюванта марки Montanide ISA-70 производства фирмы «Seppic» (Франция, стандарт ИСО 9001). Вирусный изолят, послуживший источником для получения производственного штамма Штамм Штамм Морфологические свойства Штамм Плавучая плотность полных вирионов ротавируса KPC в градиенте хлористого цезия составляет 1,36 г/см3, а однокапсидных частиц 1,38 г/см3. Коэффициент седиментации полных частиц составляет 500-530 S, а однородных частиц 380-400 S. Антигенные свойства Антиген ротавируса KPC штамма В сыворотках крови глубокостельных коров через 10 дней после второй вакцинации антитела к ротавирусу в ИФА выявляли в титрах от 8,2 до 10,8 log2, в молозиве от вакцинированных коров титры антител к ротавирусу в ИФА составляли 8,8-14,0 log2. Скармливание такого молозива обеспечивает высокий уровень колостральных антител (7,0-8,5 log2) в организме телят. Штамм Результаты исследований, представленные в таблице 1, свидетельствуют о том, что штамм Биотехнологические характеристики Штамм Штамм Устойчивость к внешним факторам Штамм Инактивированный антиген ротавируса KPC штамма Дополнительные признаки и свойства Антигенная активность – обладает антигенностью в составе инактивированных вакцинных препаратов, препарата для гипериммунизации доноров диагностических сывороток и антительных лечебных препаратов. Реактогенность – реактогенными свойствами не обладает. Стабильность – сохраняет исходные биологические (антигенные) свойства при пассировании в перевиваемых культурах клеток на протяжении 20 пассажей (срок наблюдения). Патогенность – выражена. Контагиозность – выражена. Онкогенность – отсутствует. Штамм Для получения антигенного материала из штамма При необходимости для получения антигенного материала из штамма Полученный вируссодержащий материал освобождают от клеточного детрита и других балластных примесей низкоскоростным центрифугированием и производят контроль вирусного сырья. Производственная серия ротавируса KPC должна иметь степень накопления не менее 106 вирусных частиц/см3 и активность в ИФА не менее 5,0 log2. Для инактивации ротавируса используют АЭЭИ, который вносят в очищенную вируссодержащую суспензию до концентрации 0,15%. Инактивацию вируса проводят при температуре 36-37°С в течение 24 часов. По окончании инактивации АЭЭИ нейтрализуют внесением в суспензию антигена 1М раствора тиосульфата натрия из расчета 10% к объему использованного АЭЭИ. Для изготовления эмульсионной формы предлагаемой вакцины используют антигенный материал из штамма Вирусный изолят, послуживший источником для получения производственного штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, выделен из фекалий новорожденного теленка с нарушением функции желудочно-кишечного тракта. Производственный штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC адаптирован к культурам клеток MDBK, Таурус-1, KCT и Vero. Штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC депонирован 12 марта 2001 года во Всероссийскую государственную коллекцию штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве, Федерального государственного учреждения «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ») под регистрационным наименованием «ВНИИЗЖ-ДЕП». Штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC характеризуется следующими признаками и свойствами (23). Морфологические признаки Штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC относится к семейству Coronaviridae, роду Coronavirus и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя коронавирусной инфекции KPC: сферический или плеоморфный вирион диаметром 80-100 нм состоит из нуклеокапсида спиральной симметрии и липопротеидной оболочки, на поверхности которой имеются булавовидные выступы длиной 18-24 нм, образующие подобие солнечной короны. Плавучая плотность вирионов в градиенте сахарозы составляет 1,15-1,18 г/см3. В составе вирионов обнаружены три структурных белка: пепломерный гликопротеин Е2 (180-200 кД), нуклеокапсидный фосфопротеин N (50-60 кД) и матриксный гликопротеин Е1 (23-30 кД). Антигенные свойства Антиген коронавируса KPC штамма «ВНИИЗЖ» индуцирует в организме морских свинок и кроликов образование вирусспецифических антител, выявляемых в реакции торможения гемагглютинации (РТГА). В сыворотках крови вакцинированных кроликов уровень антител колеблется от 5,4±0,25 до 7,25±0,47 log2 (в среднем 6,32±0,39 log2), а в сыворотках крови иммунизированных морских свинок – от 5,4±0,38 до 8,2±0,8 log2 (в среднем 6,1±0,49 log2). В сыворотках крови проб, отобранных за 10-15 дней до отела, дважды вакцинированных коров выявляются антитела в РТГА в титрах от 7,9±0,35 до 8,9±0,47 log2. Своевременное скармливание такого молозива обеспечивает высокий уровень колостральных антител (до 8,0 log2) в организме новорожденных телят. Биотехнологические характеристики Коронавирус KPC штамма «ВНИИЗЖ» репродуцируется в культурах клеток почек теленка (MDBK, Таурус-1), коронарных сосудов теленка (KCT) и в гетерологичной культуре клеток почек обезьяны (Vero). При 37°С в течение 3-4 суток инкубирования вирус накапливается в количестве до 108 вирусных частиц/см3 (данные электронно-микроскопического исследования). Результаты исследований по адаптации коронавируса KPC штамма «ВНИИЗЖ» к культурам клеток MDBK, Таурус-1, Vero и KCT представлены в таблице 3. Штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC обладает способностью в культуре клеток MDBK репродуцироваться с такой же степенью накопления при 34°С. Срок репродукции при этой температуре увеличивается почти на сутки, однако позволяет получать двойной урожай вируса путем смены поддерживающей среды. «Слив» обладает высокой инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью. Устойчивость к внешним факторам Штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC проявляет максимальную устойчивость в диапазоне pH 6,0-7,2. Кислая (pH 3,0) и щелочная (pH 11,0) среды оказывают на вирус инактивирующее действие. Возбудитель устойчив к воздействию трипсина. Вирус разрушается жирорастворителями: хлороформом, метиленхлоридом, эфиром, твином и тритоном Х-100. Инактивированный антиген коронавируса KPC штамма «ВНИИЗЖ» устойчив в процессе хранения при 4°С как в нативном состоянии, так и в составе инактивированных вакцин. Дополнительные признаки и свойства Антигенная активность – обладает антигенностью в составе инактивированной вакцины и препарата для гипериммунизации доноров диагностических и лечебных сывороток. Реактогенность – реактогенными свойствами не обладает. Стабильность – сохраняет исходные биологические (антигенные) свойства при пассировании в культуре клеток MDBK в течение 30 пассажей (срок наблюдения). Патогенность – выражена. Контагиозность – выражена. Онкогенность – отсутствует. Штамм «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC свободен от контаминации бактериями, микоплазмами и другими гемагглютинирующими вирусами. Для получения антигенного материала из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC в качестве чувствительной биологической системы используют преимущественно культуру клеток MDBK. При необходимости для получения антигенного материала из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC можно использовать культуры клеток Таурус-1, KCT и Vero. Полученный вируссодержащий материал очищают от балластных примесей центрифугированием или любым другим известным методом. Для инактивации вируса используют АЭЭИ, который вносят в очищенную вируссодержащую суспензию до концентрации 0,1%. Инактивацию вируса ведут при 37°С в течение 24 часов. По окончании инактивации АЭЭИ нейтрализуют внесением в суспензию антигена 1М раствора тиосульфата натрия из расчета 10% к объему использованного АЭЭИ. Для изготовления предлагаемой вакцины используют в качестве активного вещества авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного преимущественно в культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 108 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 7,0 lоg2, в количестве не менее 15,0 мас.%. При необходимости предлагаемая ассоциированная вакцина может содержать в качестве активного вещества авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Таурус-1 со степенью накопления не менее 109 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 9,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. При необходимости предлагаемая ассоциированная вакцина может содержать в качестве активного вещества авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток KCT со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. При необходимости предлагаемая ассоциированная вакцина может содержать в качестве активного вещества авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Vero со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. Полученный таким образом антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC используют для изготовления эмульсионной формы предлагаемой вакцины. Для получения ассоциированной вакцины антигенные материалы смешивают в равных весовых долях и смесь тщательно эмульгируют с масляным адъювантом в гомогенизаторе в соотношении, мас.%: 30,0:70,0. Из масляных адъювантов целесообразно использовать масляный адъювант марки Montanide ISA-70 производства фирмы «Seppic» (Франция, стандарт ИСО 9001). Содержание антигенов в предлагаемой вакцине в указанном выше соотношении является их эффективным количеством в препарате, обеспечивающим достижение технического результата. Использование предлагаемого изобретения расширяет арсенал высокоиммуногенных, безвредных и ареактогенных ассоциированных вакцин против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионных инактивированных, способных защитить поголовье KPC различных половозрастных групп от возбудителей рота- и коронавирусной инфекций KPC, циркулирующих на территории России. Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его реализации и использования. Пример 1 Для получения ассоциированной вакцины против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионной инактивированной используют производственные штаммы вирусов: штамм Посевной вирус производственного штамма Инактивацию вируса проводят рабочим раствором АЭЭИ. Во избежание изменения pH вирусной суспензии раствор АЭЭИ предварительно доводят 5М раствором уксусной кислоты до pH 7,8-8,2. Конечная концентрация инактиванта в вирусной суспензии должна быть не менее 0,15%. Инактивацию вируса проводят при температуре 36-37°С в течение 24 часов с периодическим перемешиванием суспензии (по 3-5 минут через каждые 5-6 часов). По окончании инактивации для нейтрализации АЭЭИ в суспензию антигенного материала добавляют 1М раствор тиосульфата натрия из расчета 10% к объему использованного АЭЭИ. Затем антигенный материал охлаждают до 2-8°С и отбирают пробы для проверки на остаточную инфекционную активность в культуре клеток MDBK. Для изготовления предлагаемой вакцины используют авирулентный очищенный антигенный материал из штамма Посевной вирус производственного штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC хранят перед использованием при температуре -20°С. Посевной вирус должен быть свободным от бактериальной и грибковой микрофлоры, специфичным, вызывать агглютинацию эритроцитов мышей, иметь активность в РГА не ниже 1:8 и концентрацию вирусных частиц (по результатам электронной микроскопии) в пределах от 105,0 до 106,5 вирусных частиц/см3 (21). Посевной коронавирус KPC дважды замораживают-оттаивают и используют для заражения монослойной культуры клеток MDBK. Перед заражением культуру клеток MDBK с качественным монослоем дважды отмывают от ростовой сыворотки раствором Хенкса, содержащим трипсин (15-20 мкг/см3). Множественность заражения составляет 0,1-1,0 вирусных частиц/клетку. После заражения культуральные сосуды инкубируют при 37°С в течение 1,5-2 часов, периодически покачивая. Затем производят слив вируссодержащего материала и в него вносят поддерживающую среду, содержащую трипсин (15-20 мкг/см3). Сосуды инкубируют при 34°С или 37°С до появления ЦПД вируса более чем в 90% клеток. После этого культуру дважды замораживают-оттаивают. Полученный вирусный материал очищают от балластных примесей низкоскоростным центрифугированием при 2500-3000 об/мин в течение 30 минут. Инактивацию вируса проводят с помощью АЭЭИ. Для этого в вируссодержащую суспензию вносят 6%-ный рабочий раствор АЭЭИ, подкисленный ледяной уксусной кислотой до значения pH 7,8-8,2. Конечная концентрация АЭЭИ в вируссодержащей суспензии должна быть не менее 0,1%. Инактивацию вируса проводят при температуре 36-37°С в течение 24 часов с периодическим перемешиванием суспензии (по 3-5 минут через каждые 5-6 часов). Остаток АЭЭИ нейтрализуют добавлением 1М раствора тиосульфата натрия из расчета 10% к объему использованного АЭЭИ. Полученный антигенный материал исследуют на стерильность, авирулентность, содержание вирусных частиц в суспензии с помощью электронного микроскопа и активность в РГА. Для изготовления предлагаемой вакцины используют авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного преимущественно в культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 108 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 7,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. При необходимости для изготовления предлагаемой вакцины можно использовать авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток KCT со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. При необходимости для изготовления предлагаемой вакцины можно использовать авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Vero со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. Полученные таким образом антигенные материалы используют для изготовления предлагаемой ассоциированной вакцины. Для этого антигенные материалы смешивают в равных весовых долях и смесь тщательно эмульгируют с масляным адъювантом в гомогенизаторе в соотношении, мас.%: 30,0:70,0 соответственно. Из масляных адъювантов целесообразно использовать масляный адъювант марки Montanide ISA-70 производства фирмы «Seppic» (Франция, стандарт ИСО 9001). Предлагаемая вакцина имеет оптимальный компонентный состав, мас.%:
Содержание антигенных материалов в предлагаемой вакцине в указанных выше пределах является их эффективным количеством в препарате, обеспечивающим достижение технического результата от использования изобретения. Полученная вакцина представляет собой однородную эмульсию белого или бело-розового цвета слегка вязкой консистенции. При хранении вакцины допускается незначительное отслоение минерального масла на верхней поверхности эмульсии и водной фазы на дне флакона толщиной не более 1 см. Вакцину контролируют на авирулентность и стерильность, а затем фасуют в стерильные флаконы. Стерильность вакцины определяют в соответствии с ГОСТом 28085-89. Авирулентность препарата определяют методом трехкратных последовательных пассажей инактивированного антигена в перевиваемой культуре клеток MDBK по отсутствию ЦПД. Для проверки безвредности вакцину вводят внутримышечно в область бедра 10 белым мышам в дозе 0,1 см3. Вакцина считается безвредной, если белые мыши в течение 10 суток остаются клинически здоровыми: без каких-либо патологических изменений. На месте введения препарата допускается местная тканевая реакция. Вязкость вакцины определяют на вискозиметре ВПЖ-2 и выражают мм2/с. Предлагаемая вакцина, содержащая в своем составе масляный адъювант марки Montanide ISA-70, образующего тип эмульсии «вода-масло», имеет вязкость 38,3±0,5 мм2/с. Контроль вакцины на стабильность эмульсии осуществляют посредством центрифугирования при 3000 об/мин в течение 30 минут, а также в процессе хранения при 2-8°С и 37°С с последующей визуальной оценкой однородности эмульсии. Вакцина с масляным адъювантом марки Montanide ISA-70 обладает высокой стабильностью эмульсии при хранении в различных температурных условиях и при центрифугировании. Для проверки реактогенности препарата предлагаемую вакцину вводят внутримышечно в область бедра 3 кроликам и 5 морским свинкам в дозе 2,0 см3 и 1,0 см3 соответственно. За клиническим состоянием животных ведут наблюдение в течение 14 суток. После иммунизации у кроликов и морских свинок отмечено незначительное местное повышение температуры тела и образование припухлости диаметром около 1 см в месте введения. Эти признаки полностью исчезают к концу срока наблюдения. Таким образом, предлагаемая вакцина относится к типу слабореактогенных препаратов. Антигенную активность предлагаемой вакцины проверяют на кроликах. Для этого берут 6 кроликов массой 2,0-2,5 кг. Вакцину вводят 4 кроликам подкожно в область спины по 1,0 см3. Через 14 суток после двукратного введения вакцины с интервалом 20-25 суток у кроликов берут из ушной вены по 2,0-3,0 см3 крови. Кровь выдерживают при температуре 37°С, отделяют сыворотку и исследуют ее на наличие антител к ротавирусу KPC в РДП и ИФА, а к коронавирусу KPC в РТГА. Невакцинарованных животных (2 головы) обескровливают одновременно с вакцинированными, отделяют сыворотку и ее используют для контроля. Серию вакцины считают прошедшей контроль на антигенность, если титр вирусспецифических антител к ротавирусу в РДП не ниже 4,0 log2 или в ИФА не ниже 7,0 log2, а к коронавирусу KPC в РТГА не ниже 5,0 log2. Ассоциированная вакцина против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионная инактивированная предназначена для иммунизации стельных коров и телят в хозяйствах, неблагополучных по данным заболеваниям. Специфическую профилактику начинают с иммунизации всего поголовья KPC. Вакцину вводят телятам и взрослому KPC внутримышечно в область средней трети шеи в объеме 2,0 см3 двукратно с интервалом 21-30 дней с последующей ревакцинацией через 6 месяцев. Для поддержания благополучия по данным заболеваниям следует придерживаться следующей схемы вакцинации: 1. Нетелей и коров вакцинируют двукратно с интервалом 21-30 дней. Ревакцинация через 6 месяцев. 2. Глубокостельных коров вакцинируют двукратно с интервалом 21-30 дней за 60-65 дней и 40-45 дней до отела. Ревакцинация через 6 месяцев. Иммунитет у вакцинированных животных формируется через 10-15 суток после второго введения вакцины и продолжается 6 месяцев. Пример 2 Проведены испытания антигенной активности ассоциированной вакцины против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионной инактивированной, изготовленной так, как описано в примере 1, и содержащей, мас.%:
Антигенную активность полученной вакцины определяли по следующей схеме: – определение уровня антител к рота- и коронавирусной инфекциям в сыворотках крови иммунизированных кроликов; – определение уровня антител к ротавирусу и коронавирусу KPC в сыворотках крови вакцинированных глубокостельных коров и в сыворотках крови новорожденных телят, полученных от вакцинированных коров и в молозиве. Результаты исследований сывороток крови кроликов, привитых ассоциированной вакциной против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионной инактивированной, представлены в таблице 4. Согласно данным, приведенным в таблице 4, испытуемая вакцина индуцировала в организме привитых кроликов образование вирусспецифических антител к ротавирусу в РДП в титрах 5,87±0,55 log2 и в ИФА в титрах 8,90±0,17 log2, а к коронавирусу в РТГА в титрах 6,79±0,30 log2. Для изучения влияния прививной дозы вакцины на иммунный ответ было сформировано 2 группы кроликов по 9 животных в каждой. Кроликам первой группы вводили образцы испытуемой вакцины в дозе 0,5 см3, а кроликам второй группы в дозе 1,0 см3. До вакцинации, через 21 день и 35 дней после вакцинации у животных брали пробы крови, полученные сыворотки исследовали в ИФА и РТГА для определения титров специфических антител к ротавирусу и коронавирусу KPC соответственно, которые выражали в виде log2. Результаты исследований представлены в таблице 5. Полученные данные свидетельствуют о том, что испытуемая вакцина в дозе 0,5 см3 и 1,0 см3 на 35 день после вакцинации индуцирует образование антител к ротавирусу в титрах 8,88±0,27 log2 и 10,08±0,35 log2, а к коронавирусу в титрах 6,30±0,27 log2 и 7,50±0,45 log2 соответственно, что также подтверждает существование зависимости «доза-эффект». Предлагаемая вакцина была испытана на глубокостельных коровах. Результаты этих исследований представлены в таблице 6. Данные, представленные в таблице 6, свидетельствуют о том, что испытуемая вакцина индуцирует в организме глубокостельных коров образование антител к ротавирусу и коронавирусу в высоких титрах. Пример 3 Проведены испытания эффективности ассоциированной вакцины против рота- и коронавирусной инфекций KPC эмульсионной инактивированной, изготовленной так, как описано в примере 1, и содержащей, мас%:
В 11 животноводческих хозяйствах была испытана схема профилактики вирусных диарей, вызванных ротавирусом и коронавирусом KPC. Иммунизацию глубокостельных коров проводили предлагаемой вакциной за 40-45 и 20-25 дней до отела. Результаты вакцинации представлены в таблице 7. Приведенные в таблице 7 данные свидетельствуют о том, что у 78% новорожденных телят, полученных от невакцинированных (контрольных) коров, регистрировались признаки диареи. В течение 20 дней в контрольной группе погибло 25,1% телят. У 11% новорожденных телят, полученных от вакцинированных коров, отмечены нарушения пищеварения, из них пало 3,9% телят. Источники информации 1. Литвин В.П., Поживал А.И. Инфекционные и инвазионные болезни телят. – Киев, 1991. – 207 с. 2. Миськевич С.В. Разработка реакции связывания комплемента для диагностики ротавирусной диареи телят: Автореф. дис. на соискание уч. степени канд. вет.наук. – Киев, 1985. – 22 с. 5. Скибицкий В.Г. Ротавирусная инфекция крупного рогатого скота (ротавирусный энтерит). – Киев. Укр. IHTEI, 1999. – 208 с. 6. Гаффаров Х.З., Иванов А.В., Непоклонов Е.А., Равилов А.З. Моно- и смешанные диареи новорожденных телят. – Казань: ФЭН, 2002. – 590 с.
8. Инфекционные болезни животных: Справочник. Под ред. Д.Ф.Осидзе. – М.: Агропромиздат, 1987, 288 с. 9. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьев Б.В., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных. – М., ВНИИТИБП, 1998, 928 с. 10. Инфекционная патология животных: В 2 т. / под ред. А.Я.Самуйленко, Б.В.Соловьева, Е.А.Непоклонова, Е.С.Воронина. – М.: «Академкнига», 2006. – Т.1. – 911 с. 11. Пат. РФ 12. Пат. РФ 13. Пат. ЧССР 14. Пат. ЧССР 15. Пат. ЧССР 16. Пат. ЧССР 17. Пат. РФ 18. WO 2002/062382; A61K 39/15, 39/215. 39/08, 39/108; 15.08.2002 г. 19. Наставление по применению вакцины инактивированной комбинированной против ИРТ, ПГ-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота- и коронавирусной болезни телят КОМБОВАК, 20. Пат. РФ 21. Пономарев А.П., Молчанова А.И., Узюмов В.Л. Определение концентрации частиц вируса ящура в суспензиях. – Ветеринария, 1983, 22. Пат. РФ 23. Пат. РФ
Формула изобретения
1. Ассоциированная вакцина против ротавирусной и коронавирусной инфекций крупного рогатого скота (KPC) эмульсионная инактивированная, содержащая активное вещество и целевую добавку, отличающаяся тем, что в качестве активного вещества она содержит смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма 2. Ассоциированная вакцина по п.1, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 3. Ассоциированная вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 4. Ассоциированная вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 5. Ассоциированная вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 6. Ассоциированная вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 7. Ассоциированная вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма 8. Ассоциированная вакцина по п.1, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток животного происхождения, взятой из группы, состоящей из культуры клеток MDBK, из культуры клеток почки теленка Таурус-1, из культуры клеток КСТ и из культуры клеток Vero, в эффективном количестве. 9. Ассоциированная вакцина по п.8, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток MDBK со степенью накопления не менее 108 вирусных частиц/см3 и активностью в реакции гемагглютинации (РГА) не менее 7,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 10. Ассоциированная вакцина по п.8, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Таурус-1 со степенью накопления не менее 109 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 9,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 11. Ассоциированная вакцина по п.8, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток KCT со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 12. Ассоциированная вакцина по п.8, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный очищенный антигенный материал из штамма «ВНИИЗЖ» коронавируса KPC, полученного в культуре клеток Vero со степенью накопления не менее 107,5 вирусных частиц/см3 и активностью в РГА не менее 6,0 log2, в количестве не менее 15,0 мас.%. 13. Ассоциированная вакцина по п.1, отличающаяся тем, что в качестве целевой добавки она содержит масляный адъювант в количестве не менее 70,0 мас.%. 14. Ассоциированная вакцина по любому из пп.1-13, отличающаяся тем, что она содержит смесь авирулентных очищенных антигенных материалов из штамма
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||

101 ВНИИЗЖ-ДЕП ротавируса КРС и из штамма «ВНИИЗЖ-ДЕП» коронавируса КРС в количествах, обеспечивающих протективную иммунную активность в организме животного при введении ему целевого препарата, и масляный адъювант в эффективном соотношении. Вакцина индуцирует у иммунизированных животных высокий уровень антител против возбудителей рота – и коронавирусной инфекций КРС и способна защитить поголовье КРС различных половозрастных групп от вышеуказанных заболеваний. Изобретение может быть использовано в ветеринарии. 13 з.п. ф-лы, 7 табл.
.
,
, где: