Патент на изобретение №2354697
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА ASPERGILLUS ORYZAE – ПРОДУЦЕНТ КИСЛОЙ АЛЬФА-АМИЛАЗЫ
(57) Реферат:
Изобретение относится к биотехнологии. Штамм мицелиального гриба Aspergillus oryzae ВКМ F-3927 D – продуцент кислой
Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в микробиологической промышленности при производстве кислой
По составу конечных продуктов гидролиза крахмала Роль кислой Известны микроорганизмы различных таксономических групп – продуценты амилаз и способы их культивирования в аэробных условиях. Выбор штамма-продуцента зависит от его способности обеспечить высокий уровень активности в культуральной жидкости, скорости биосинтеза, выхода ферментов с единицы использованного субстрата, стоимости субстрата. В мировой практике для промышленного получения продуктов гидролиза крахмала используют, главным образом, амилазы, образуемые грибами, относящиеся к роду Aspergillus с желто-зеленым пигментообразованием: Asp.flavus Asp.oryzae, Asp.glauscus, Asp.ochraceusi, Asp.fumigatus, в том числе рекомбинантными. Применение рекомбинантных штаммов существенно усложняет процесс получения ферментных препаратов. Это связано, в первую очередь, с необходимостью проведения постоянных исследований по поддержанию штаммов в стабильном и активном состоянии, созданием специальных условий культивирования, не всегда доступных при промышленном ведении процесса. В настоящее время в России препараты кислых Известен штамм плесневелого гриба Asp.oryzae 740-А2 – активный продуцент Недостатком известного штамма следует признать нестабильную активность Известен (US, патент 4,593,005) штамм Asp.oryzae – продуцент кислой Известен (SU, авторское свидетельство 1158579) штамм микроскопического гриба Asp.oryzae НРВ-169 (коллекция Центрального Музея промышленных микроорганизмов «ВНИИГенетика», коллекционный номер ЦМПМ F-257) – продуцент Известен также (RU, патент 2070921) штамм Asp.oryzae 387 (ВКПМ F-683) – продуцент комплекса кислых и слабокислых протеаз, амилолитических и цитолитических ферментов. При культивировании на питательной среде, содержащей, %: ячменная мука – 3,0; отруби – 3,0; КН2PO4 – 1,5; водопроводная вода, рН естественный, в аэробных условиях при 28-30°С в течение 42-48 ч штамм синтезирует комплекс кислых и слабокислых протеаз с общей протеолитической активностью 11,5 ед ПС/мл, кислую Известен (SU, авторское свидетельство 1440922) штамм Asp.oryzae ВКПМ F-369 – продуцент амилолитических и протеолитических ферментов. При культивировании на питательной среде, содержащей, %: ячменная мука – 14,0; соевая мука – 0,5; КН2PO4 – 0,5; водопроводная вода, рН естественный, в аэробных условиях при 28°С в течение 96 ч штамм синтезирует комплекс кислых и слабокислых протеаз, при этом ферментативные активности составляют по АС – 20,7, по ПС – 17,3 ед/мл. Однако заявляемая амилолитическая активность штамма Asp.oryzae ВКПМ-F-369 очень низкая, что делает его практическое применение с этой точки зрения нецелесообразным. Известен штамм Asp.awamori М-2002 (ВКМ F-3771D) (Семенова М.В. и др. Микробные биокатализаторы для перерабатывающих отраслей АПК – М.: ВНИИПБТ, 2006, 304 с.). При культивировании в глубинных условиях в течение 192 ч на питательной среде, при использовании в качестве источника углерода гидролизата муки злаковых культур штамм синтезирует глюкоамилазу с активностью 800-1080 ед/мл. Введение солей CaCO3, MgSO4 или комплексного соединения углекислых солей кальция и магния (или окиси магния) в питательные среды способствует стабилизации рН среды в течение всей ферментации на уровне от 5,9 до 6,4, что приводит к изменению направленности процесса биосинтеза в сторону увеличения синтеза кислой Недостатками всех вышеперечисленных продуцентов являются низкая продуктивность штаммов применительно к кислой Техническая задача, на решение которой направлено настоящее изобретение, состоит в получении нового высокопродуктивного штамма мицелиальных грибов – продуцента кислой Технический результат, который может быть получен при осуществлении изобретения, состоит в получении нового высокопродуктивного штамма – продуцента кислой Для достижения указанного технического результата предложено использовать новый селекционированный мутантный штамм мицелиального гриба Asp.oryzae UV27R-14 – продуцент кислой Штамм Asp.oryzae (Ahlburg) Е. Cohn UV27R-14 депонирован во Всероссийской коллекции микроорганизмов при Институте биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г.К.Скрябина РАН под Штамм Asp.oryzae ВКМ F-3927D получен методом многоступенчатой генетической селекции с применением эффективного мутагенеза – ультрафиолетового облучения с одновременным воздействием химических мутагенов из штамма Asp.oryzae ВКМ F-52 согласно следующей методике. Суспензию спор исходного штамма, полученную в дистиллированной воде с добавлением 0,1% Твина-80, облучают ультрафиолетом (облучение световым потоком мощностью 3 мВт/см2) в течение 10 мин. Облученные споры высевают на чашки Петри с селективными средами, выращивают при 35°С в течение 5 суток. Мутанты с улучшенной продукцией кислой Условия хранения. Штамм может храниться в лиофилизированном состоянии в течение нескольких лет и/или на косячках с агаризованной средой Чапека или сусло-агаре при +4°С при обязательных пересевах не реже одного раза в течение 3-6 месяцев. Макроскопические характеристики. Колонии на агаре Чапека с дрожжевым экстрактом (CYA) при 25°С имеют диаметр 65-70 мм/7 сут, зеленовато-желтые, поверхность пушистая до хлопьевидной, край ровный; мицелий плотный, белый, эксудат отсутствует, обратная сторона неокрашенная. Колонии на агаре Чапека с дрожжевым экстрактом (CYA) при 37°С имеют диаметр 60-65 мм/7 сут, оливково-желтоватые, поверхность пушистая, край ровный; мицелий плотный, белый, эксудат отсутствует, обратная сторона неокрашенная. Колонии на агаре Чапека с дрожжевым экстрактом и 20% сахарозы (CY20S) при 25°С имеют диаметр колонии 67-71 мм/7 сут, оливково-желтые, поверхность пушистая до клочковатой, край ровный; мицелий плотный, белый, эксудат отсутствует, обратная сторона неокрашенная. Колонии на Мальц-агаре (МЕА) при 25°С имеют диаметр 65-70 мм/7 сут, зеленовато-желтые, поверхность клочковатая, край ровный; мицелий не очень плотный, белый, эксудат отсутствует, обратная сторона желтовато-серая. Микроскопические характеристики. Конидиальные головки шаровидные до рыхло колонковидных. Конидиеносцы не окрашены, гладкостенные до слабо шероховатых, 500-1000х10-25 мкм. Везикулы (апикальные расширения) полушаровидные до грушевидных, 22-50 мкм шириной; стеригмы одноярусные и двухъярусные в пределах одной колонии, покрывают от 1/2 до 2/3 поверхности везикулы, метулы – 8-12×4-6 мкм, фиалиды – 8-12×3-5 мкм. Конидии шаровидные, 4,0-8,5 мкм в диаметре, гладкостенные до слабо шероховатых при старении. Образует ферментные системы, позволяющие расти на соответствующих комплексных субстратах: крахмале, Данный вид мицелиального гриба не числится в качестве патогенного в “Положении порядка учета, хранения, обращения, отпуска и пересылки культур бактерий, вирусов, риккетсий, грибов, простейших, микоплазм, бактериальных токсинов, ядов биологического происхождения”. Полученный мутант по своим морфологическим свойствам отличается от исходного характером спороношения, цветом пигмента спор, более коротким циклом роста при выращивании на твердых и жидких средах, повышенным синтезом кислой При изучении морфологической изменчивости при рассеве штамма Asp.oryzae на селективных средах отмечено выщепление нетипичных колоний в количестве 5-7%, что свидетельствует о стабильности культуры. Культивирование штамма Asp.oryzae ВКМ F-3927D осуществляют в аэробных условиях в погружном состоянии при температуре 35°С в течение 120 часов, рН среды 5.8-6.2. Для роста культуры и биосинтеза кислой Активность кислой Ферментные препараты, полученные с помощью предлагаемого штамма, могут быть использованы в виде культуральной жидкости, жидких концентрированных препаратов, получаемых с помощью ультрафильтрации или упаривания культуральной жидкости, или в виде сухих препаратов (Амилоризин Г10х, Г20х), получаемых осаждением этанолом или другими органическими растворителями из ультрафильтрата культуральной жидкости, а также высушиванием или гранулированием. Методом гидрофобной хроматографии ферментного препарата Амилоризина Г10х получена гомогенная кислая Таким образом, свойства фермента кислой Пример 1. Посевной материал (инокулюм) получают выращиванием штамма на жидкой питательной среде состава: пшеничная мука – 6%, соевая мука – 4%, кукурузный экстракт – 1%, NH4NO3 – 0,3%, КН2PO4 – 0,02%, СаСО3 – 1,2%, вода дистиллированная, рН среды 5,8-6,2, в колбах, содержащих 50 мл стерильной среды, на качалке с 240 об/мин при 30°С в течение 48 часов. Полученный посевной материал в количестве 2% к объему среды вносят в качалочные колбы объемом 750 мл, содержащие 50 мл среды следующего состава, мас.%: пшеничная мука – 6%, соевая мука -4%, кукурузный экстракт – 1%, NH4NO3 – 0,3%, КН2PO4 – 0,02%, СаСО3 – 1,2%, вода водопроводная, рН среды 5,8-6,2. Среду предварительно обрабатывают ферментным препаратом бактериальной кислой Культивирование осуществляют в аэробных условиях на качалке (240 об/мин) при температуре 30°С. Максимальная ферментативная активность кислой Пример 2. Культивирование осуществляют в качалочных колбах, как описано в примере 1, используя жидкую питательную среду следующего состава, мас.%: кукурузный крахмал – 10%, соевая мука – 4%, кукурузный экстракт – 1%, NH4NO3 – 0,3%, КН2PO4 – 0,02%, СаСО3 – 1,2%, вода водопроводная, рН среды 5,8-6,2. Максимальная ферментативная активность кислой Пример 3. Культивирование осуществляют в качалочных колбах, как описано в примере 1, используя жидкую питательную среду следующего состава, мас.%: пшеничная мука – 10%, соевая мука – 4%, кукурузный экстракт – 1%, NH4NO3 – 0,3%, КН2PO4 – 0,02%, СаСО3 – 1,2%, вода водопроводная, рН среды 5,8-6,2. Максимальная ферментативная активность кислой Пример 4. Проводят процесс культивирования в лабораторных ферментерах фирмы “Anglicon” (Великобритания), емкостью 10 л, оснащенных системами автоматического регулирования рН, pO2, температуры и пеногашения. Массообмен осуществляется при помощи барботера и двухъярусной мешалки, обеспечивающих аэрацию – до 15 г O2/л ч. Условия культивирования: коэффициент загрузки ферментеров – 0,5; посевной материал – вегетативная культура, выращенная в колбах (по примеру 1); доза засева посевной культуры в ферментер – 2%. Температурный режим – дифференцированный: первые 48 ч культивирования 35°С, далее 30°С. Состав ферментационной среды, г/л: пшеничная мука – 6%, соевая мука – 4%, кукурузный экстракт – 1%, NH4NO3 – 0,3%, КН2PO4 – 0,02%, СаСО3 – 1,2%, вода водопроводная, рН среды 5,8-6,2. На 24 и 30 ч культивирования вносят подпитку в виде 50%-го гидролизата крахмала кукурузной муки в количестве 30% от объема ферментационной среды. Активность кислой Полученные данные свидетельствуют об увеличении активности амилазы в культуральной жидкости заявляемого штамма Asp.oryzae ВКМ F-3927D по сравнению с наиболее известным из штаммов-мутантов Asp.awamori М-2002 в 8-10 раз. Для достижения высокой активности штамма не требуется применения сложных и дорогих питательных сред. Для культивирования могут использоваться питательные среды, традиционно применяемые в промышленных технологиях получения такого рода ферментных препаратов. Высокий уровень активности кислой
Формула изобретения
Штамм мицелиального гриба Aspergillus oryzae ВКМ F-3927D – продуцент кислой
|
||||||||||||||||||||||||||

721
-амилазы, может быть использован в различных областях промышленности и сельского хозяйства для осахаривания крахмалсодержащего сырья. Изобретение позволяет увеличить выход кислой
-глюкане, пектине и галактоманнане.