Патент на изобретение №2349643

Published by on




РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ



ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА
ПО ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ СОБСТВЕННОСТИ,
ПАТЕНТАМ И ТОВАРНЫМ ЗНАКАМ
(19) RU (11) 2349643 (13) C2
(51) МПК

C12N7/02 (2006.01)

(12) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ПАТЕНТУ

Статус: по данным на 08.09.2010 – действует

(21), (22) Заявка: 2007102040/15, 22.01.2007

(24) Дата начала отсчета срока действия патента:

22.01.2007

(43) Дата публикации заявки: 27.07.2008

(46) Опубликовано: 20.03.2009

(56) Список документов, цитированных в отчете о
поиске:
Широбоков В.П. и др. Применение бентонита для выявления энтеровирусов у человека во внешней среде. Методические рекомендации. – Киев, 1986. SU 1742333 A1, 23.06.1992. SU 1747486 A1, 15.07.1992. SU 1834289 A1, 27.04.1996. КРАСИЛЬНИКОВ И.В. и др., Выделение вирусов из воды с использованием пористых кремнеземов. – Вопр. Вирусол., 1985, 30 (2), с.608.

Адрес для переписки:

02093, Украина, г. Киев-93, а/я 3, Н.Е. Ясинской

(72) Автор(ы):

Обертынская Оксана Владимировна (UA),
Трохименко Елена Петровна (UA),
Корчак Галина Ивановна (UA),
Дзюблик Ирина Владимировна (UA)

(73) Патентообладатель(и):

Толчеев Юрий Захарович (UA),
Семенов Владимир Георгиевич (UA),
Чигирик Александр Викторович (UA)

(54) СПОСОБ КОНЦЕНТРАЦИИ ВИРУСОВ ИЗ ЖИДКИХ СРЕД

(57) Реферат:

Изобретение относится к области биотехнологии и касается способа концентрации вирусов из жидких сред. Способ включает адсорбцию вируса на гидрогеле метакриловой кислоты в концентрации не менее 2,0 мг/мл, сорбции при рН 5,0 от 20 минут до 24 часов при температуре от 4°С до 22°С и далее комплекс вирус-сорбент центрифугируют и вирус элюируют. Преимущество изобретения заключается в сокращении числа стадий и уменьшении времени концентрирования. 1 з.п. ф-лы, 3 табл.

Изобретение относится к области медицины, а именно вирусологии и биотехнологии, и может быть использовано для концентрации вирусов из воды, водных растворов, биологических сред; для выявления вирусов в воде питьевой, сточной, воде открытых водоемов, которые используются как источники водоснабжения, водопроводной воде, воде подземных источников, питьевой воде бутылированной, воде морской и пресных водоемов, которые используются для рекреационных целей, воде плавательных бассейнов; для очистки вирусных суспензий, используемых для изготовления вирусных антигенов и вакцин, очистки вирусов, полученных из тканевых культур, от клеточного детрита.

Таблица 1.
Схема концентрации вирусов из водной среды
Этап Исследуемый материал Обработка
Адсорбция Сточная вода (250 мл) 1) вносят 3,0 г NaCl до 0,1 М концентрации;
2) вносят 0,5 мл 5% геля бентонита;
3) вносят 1 М HCl раствор до рН=4,5-5,0;
4) встряхивание 4-5 мин;
5) центрифугирование при 1000 об/мин 7-10 мин
Обессоливание Осадок (комплекс вирус + бентонит) 1) вносят 10 мл дист. воды (рН-1,5);
2) встряхивание 4-5 мин;
3) центрифугирование при 3000 об/мин 7-10 мин;
Элюция Осадок (комплекс вирус + бентонит) 1) вносят 1 мл 0,05 М раствора трис-буфера (рН-8,2-9,0);
2) встряхивание 4-5 мин;
3) центрифугирование при 3000 об/мин 7-10 мин;
4) отбирают элюат, деконтаминируют и исследуют на наличие в нем вирусов или вирусных антигенов.

Известный способ включает помещение сорбента в пробу жидкой среды, выдерживание временного интервала с последующим центрифугированием исследуемой пробы, удаление надосадочной жидкости, получение комплекса вирус + сорбент и последующую элюцию вирусов. Недостатками способа являются продолжительность и трудоемкость приготовления геля бентонита, нестандартизированностъ сорбента, которая зависит от места его добычи.

В основу изобретения поставлена задача усовершенствования способа концентрации вирусов из жидких сред, в котором применение гидрогеля метилкремниевой кислоты сокращает продолжительность и трудоемкость способа и повышает процент выявления вирусов при исследовании различных жидких сред.

Поставленная задача решается тем, что в способе концентрации вирусов из жидких сред, который включает помещение сорбента в пробу жидкой среды, выдерживание временного интервала с последующим центрифугированием исследуемой пробы, удаление надосадочной жидкости, получение комплекса вирус + сорбент и последующую элюцию вирусов, согласно изобретению в качестве сорбента используют гидрогель метилкремниевой кислоты (ГГМКК), который обладает адсорбционными свойствами по отношению к биологическим объектам вирусной природы, временной интервал выдерживают от 20 минут до 24 часов при температуре от +4°С до +22°С, а получение комплекса вирус + сорбент осуществляют без проведения этапа обессоливания.

Согласно изобретению ГГМКК, способный в концентрации не менее 30 мг/мл адсорбировать не менее 96% вирусных частиц из водных сред, помещают в пробу водной среды, при этом исследуемую пробу подкисляют раствором кислоты до рН=5,0.

Согласно изобретению ГГМКК, который способен в концентрации не менее 2 мг/мл адсорбировать не менее 90% вирусных частиц из биологических сред, помещают в пробу биологической среды.

Заявители изобретения являются изобретателями и заявителями способа получения сорбента на основе гидрогеля метилкремниевой кислоты (заявка № а 2006 10083), в котором, благодаря новому способу получения, указанный сорбент имеет объем пор не менее 0,8 см3/г и обладает высокой адсорбционной активностью в отношении веществ с большой молекулярной массой (5-900 кД) и различных биологических объектов, в том числе вирусной природы. Гидрогель метилкремниевой кислоты – это новый эффективный сорбент, который имеет глобулярную структуру пористой кремнийорганической матрицы. На ее поверхности присутствуют гидроксильные группы, благодаря чему поверхность глобул и пор активно сольватируется полярными молекулами воды, и метильные группы, обусловливающие гидрофобные свойства и сродство к тканям и биосубстратам организма. Сорбент ГГМКК безопасен, имеет высокую селективность, адсорбционная емкость по конго красному достигает 3,0-3,5 мг/г (или 4,5-5,0 мкмоль/г). Используется как сорбент в различных отраслях медицины и ветеринарии.

Цель изобретения состоит в повышении эффективности концентрации вирусов из проб жидких сред, уменьшении стадий в процедуре выполнения, сокращении времени концентрации, создании возможности концентрации вирусов из минимальных объемов жидких сред, использовании для концентрации готового вещества (сорбента), состав и качество которого гарантируется соответствующими ФС и ТУ.

Способ осуществляется следующим образом. ГГМКК, полученный способом, заявленным в № а 2006 10083, имеющий адсорбционные свойства относительно биологических объектов вирусной природы, помещают в пробу жидкой среды, выдерживают от 20 минут до 24 часов при температуре от +4°С до +22°С. ГГМКК, способный в концентрации 30 мг/мл адсорбировать не менее 96% вирусных частиц из водной среды, помещают в пробу водной среды, а также в пробу биологической среды, загрязненные вирусами. Проводят адсорбцию вирусов, после чего ГГМКК концентрируют центрифугированием и удаляют надосадочную жидкость. Затем осуществляют элюцию вирусов и отделяют ГГМКК от раствора центрифугированием. В надосадочной жидкости осуществляют индикацию и идентификацию вирусов.

Пример 1. Концентрация вирусов из проб сточной воды.

Способ осуществляется как описано в п.п.1.2, при этом пробу воды (500 мл предварительно осветленной сточной воды) подкисляют при помощи 1 М HCl до рН=5,0, в подкисленную пробу помещают сорбент ГГМКК в количестве 1 г и выдерживают 20 минут при температуре 20°С. После экспозиции пробу с сорбентом центрифугируют при 1000 об/мин. в течение 20 минут. Надосадочную жидкость удаляют и получают комплекс вирус + сорбент, процесс обессоливания отсутствует.

Пример 2. Концентрация вирусов из проб питьевой воды.

Способ осуществляется как описано в п.п.1.2, при этом пробу воды подкисляют при помощи 1 М HCl до рН=5,0, в подкисленную пробу (10 л питьевой воды) помещают сорбент ГГМКК в количестве 20 г и выдерживают до 20 часов при температуре 20°С, надосадок осторожно сливают через край, оставляя на дне стеклянного сосуда 200 мл неплотного белого осадка. Полученный осадок (осадок + небольшое количество надосадка) встряхивают и переносят в стаканы или флаконы для центрифугирования по 250 мл и центрифугируют при 1000 об/мин в течение 20 минут. Образовавшийся белый осадок также не плотный, поэтому надосадочную жидкость снова сливают через край, оставляя на дне флакона 20 мл. Этот осадок встряхивают, переносят в две пробирки для центрифугирования и повторно центрифугируют. После второго центрифугирования плотный осадок формируется на дне пробирок, надосадочную жидкость удаляют пастеровской пипеткой и получают комплекс вирус + сорбент, процесс обессоливания отсутствует.

Пример 3. Концентрация вирусов из проб воды открытых водоемов и подземных источников.

Способ осуществляется как описано в п.п.1.2, при этом пробу воды (2 л) подкисляют при помощи 1 М HCl до рН=5,0, в подкисленную пробу помещают сорбент ГГМКК в количестве 4 г и выдерживают до 20 минут при температуре 20°С. После экспозиции пробу с сорбентом центрифугируют при 1000 об/мин в течение 20 минут. Надосадочную жидкость удаляют и получают комплекс вирус + сорбент, процесс обессоливания отсутствует.

Пример 4.1. Концентрация вирусов из проб культуральной жидкости.

Способ осуществляется как описано в п.п.1.3, при этом в культуральную вирусосодержащую жидкость (КВЖ), содержащую ротавирус обезьян SA-11 с инфекционным титром 7,5 lg ТЦД50/мл, добавляют сорбент ГГМКК из расчета 2 мг на 1 мл жидкости. Формирование комплекса ротавирус + сорбент осуществляют при температуре 20°С в течение 10 часов, периодически перемешивая. Образовавшийся комплекс ротавирус + сорбент выделяют низкоскоростным центрифугированием. В надосадочной жидкости отсутствие вируса контролируют, определяя инфекционный титр ротавируса титрованием по ЦПД в чувствительной культуре клеток. Результаты осуществления способа представлены в таблице 2.

Пример 4.2.

Способ выполняют как в примере 4.1, но ГГМКК помещают в культуральную жидкость из расчета 1,5 мг/мл. Результаты выполнения способа представлены в таблице 2.

Пример 4.3.

Способ выполняют как в примере 4.1, но ГГМКК помещают в культуральную жидкость из расчета 2,5 мг/мл. Результаты выполнения способа представлены в таблице 2.

Пример 4.4.

Способ выполняют как в примере 4.1, но ГГМКК помещают в культуральную жидкость из расчета 5,0 мг/мл. Результаты выполнения способа представлены в таблице 2.

Пример 4.5.

Способ выполняют как в примере 4.1, но ГГМКК помещают в культуральную жидкость из расчета 10 мг/мл. Результаты выполнения способа представлены в таблице 2.

Примеры 4.6-4.10.

Способ выполняют как в примерах 4.1-4.5, но используют культуральную жидкость, которая содержит вирус полиомиелита II типа штамм Себина с инфекционным титром 10,5 lg ТЦД50/мл. Результаты выполнения способа представлены в таблице 2.

Примеры 5.1-5.5. Концентрация вирусов из проб плазмы крови человека.

Способ осуществляют как в п.3 и примерах 4.1.-4.5, но вместо вирусосодержащей жидкости используют плазму крови человека, которая содержит вирус везикулярного стоматита (ВВС), штамм Индиана. Результаты осуществления способа представлены в таблице 2.

Пример 6. Способ концентрации вирусов-колифагов из проб питьевой воды.

Способ осуществляется как описано в п.п.1.2 и в примере 2, только концентрируемые вирусы являются колифагами Т2 (бактериофаг эшерихии Т2), а ГГМКК вносят из расчета 50 мг/мл. После экспозиции пробу с сорбентом центрифугируют при 1000 об/мин в течение 20 минут, надосадочную жидкость удаляют и получают комплекс колифаг Т2 + сорбент, процесс обессоливания отсутствует.

Примеры осуществления способа с элюцией вирусов.

Пример 7.1.

Способ осуществляют как в примере 4.1., но удаленный низкоскоростным центрифугированием комплекс «ротавирус SA-11 + сорбент» помещают в раствор 0,14 М фосфатно-солевого буфера (ФСБ) с рН=8,5, объем которого в 10 раз меньше объема КВЖ, из которой был адсорбирован ротавирус. Полученную суспензию интенсивно встряхивают в течение 10 минут при температуре 20°С и оставляют в тех же условиях для десорбции еще на 20 минут. Сорбент удаляют низкоскоростным центрифугированием. Супернатантную жидкость, содержащую ротавирус, отбирают в стерильную пробирку, доводят ее рН до 7,2-7,4 1 М раствором HCl, и деконтаминируют. Инфекционный титр ротавируса в полученном супернатанте определяют по ЦПД титрованием микрометодом в культуре клеток НЕР-2. Одновременно, в этих же условиях титруют и образцы КВЖ, из которой адсорбируют ротавирус. Титрование повторяют в трех параллельных опытах. Титрование каждого образца проводят в 4 рядах лунок 96-лункового культурального планшета. Инфекционный титр ротавируса в культуральной жидкости и в образцах элюата рассчитывают по методу Кербера. Результаты выполнения способа представлены в таблице 3.

Пример 7.2.

Способ осуществляют как в примере 7.1, но элюцию проводят при рН=8,0. Результат выполнения способа представлен в таблице 3.

Пример 7.3.

Способ осуществляют как в примере 7.1, но элюцию проводять при рН=9,0. Результат виполнения способа представлен в таблице 3.

Пример 7.4.

Способ осуществляют как в примере 7.1, но элюцию проводят при рН=9,3. Результат выполнения способа представлен в таблице 3.

Пример 7.5.

Способ осуществляют как в примере 7.1, но элюцию проводят в 0,05 М трис-буферном растворе при рН=8,5. Результаты выполнения способа представлены в таблице 3.

Пример 7.6.

Способ осуществляют как в примере 7.5, но элюцию проводят при рН=8,0. Результаты выполнения способа представлены в таблице 3.

Пример 7.7.

Способ осуществляют как в примере 7.5, но элюцию проводят при рН=9,0. Результаты выполнения способа представлены в таблице 3.

Пример 7.8.

Способ осуществляют как в примере 4.6, но выделенный низкоскоростным центрифугированием комплекс «вирус полиомиелита II типа штамм Себина + сорбент» помещают в раствор 0,14 М фосфатно-солевого буфера с рН=8,5, объем которого в 10 раз меньше объема КВЖ, из которой был адсорбирован полиовирус. Полученную суспензию интенсивно встряхивают в течение 10 минут при температуре 20°С и оставляют в тех же условиях для десорбции еще на 20 минут. Сорбент удаляют низкоскоростным центрифугированием. Супернатантную жидкость, содержащую полиовирус, отбирают в стерильную пробирку, доводят ее рН до 7,2-7,4 1 М раствором HCl и деконтаминируют. Инфекционный титр полиовируса в полученном супернатанте определяют по ЦПД титрованием микрометодом в культуре клеток НЕР-2. Одновременно, в тех же условиях титруют и образцы КВЖ, из которой адсорбировали полиовирус. Титрование повторяют в трех параллельных опытах. Титрование каждого образца виполняют в 4 рядах лунок 96-лункового культурального планшета. Инфекционный титр полиовируса в культуральной жидкости рассчитывают по методу Кербера. Результаты выполнения способа представлены в таблице 3.

Пример 7.9.

Способ виполняют как в примере 7.8, но элюцию проводят в 0,05 М трис-буферном растворе при рН=8,5. Результаты виполнения способа представлены в таблице 3.

Пояснение. Элюцию вируса везикулярного стоматита из комплекса «вирус + сорбент» не проводили, поскольку цель состояла в максимальном очищении плазмы крови от вируса, а не в его концентрировании, в этом случае поиск условий десорбции ВВС не нужен.

Предлагаемый способ обеспечивает сокращение стадий в процессе выполнения, уменьшение времени концентрирования, возможность концентрации вирусов из минимальных объемов жидких сред, благодаря чему увеличивается точность и повышается процент выявления вирусов при исследовании различных жидких сред.

Таблица 3.
Эффективность элюции (десорбции) вирусов из комплексов «вирус + сорбент» в буферных растворах при различных значениях их ионной силы (рН).
№/№ примера lg инфекционного титра вируса в исходной КВЖ М±м Буферный раствор для элюции рН буферного раствора lg инфекционного титра вируса в элюате М±м
Ротавирус обезьян SA-11
7.1. 7,50; 7,25; 7,75 7,50±0,25 0.14 М ФСБ 8,5 8,5; 8,25; 8,25 8,33±0,14
7.2. 7,50; 7,25; 7,50 7,50±0,25 0.14 М ФСБ 8,0 8,0; 7,5; 7,0 7,50±0,50
7.3. 7,50; 7,25; 7,50 7,50±0,25 0.14 М ФСБ 9,0 8,5; 8,25; 8,50 8,42±0,14
7.4. 7,50; 7,25; 7,50 7,50±0,25 0,14 М ФСБ 9,3 6,50; 7,0; 6,25 6,58±0,38
7.5. 7,50; 7,25; 7,75 7,50±0,25 0,05 М трис-буфер 8,5 8,50; 8,25; 8,50 8,42±0,14
7.6. 7,50; 7,25; 7,75 7,50±0,25 0,05 М трис-буфер 8,0 6,50; 6,75; 6,50 6,58±0,14
7.7. 7,50; 7,25; 7,75 7,50±0,25 0,05 М трис-буфер 9,0 5,25; 6,75; 6,0 6,17±0,80
Вирус полиомиелита II типа штамм Себина
7.8. 10,50; 10,25; 10,75 10,5±0,25 0.14 М ФСБ 8,5 11,50; 11,25; 11,50 11,48±0,14
7.9. 10,50; 10,25; 10,75 10,5±0,25 0,05 М трис-буфер 8,5 11,25; 11,50; 11,25 11,48±0,14

Формула изобретения

1. Способ концентрации вирусов в жидких средах, включающий сорбцию вирусов из жидких сред на сорбенте в течение временного интервала с последующим отделением комплекса вирус + сорбент центрифугированием и элюцией вирусов, отличающийся тем, что в качестве сорбента используют гидрогель метилкремневой кислоты в концентрации не менее 2 мг/мл сорбента, сорбцию проводят при рН 5,0 от 20 мин до 24 ч при температуре от +4 до +22°С.

2. Способ концентрации вирусов по п.1, отличающийся тем, что используют гидрогель метилкремниевой кислоты, в концентрации не менее 30,0 мг/мл, который обладает способностью адсорбировать не менее 96% вирусных частиц из водных сред, при рН 5,0.


PC4A – Регистрация договора об уступке патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение

Прежний патентообладатель:

Толчеев Юрий Захарович (UA),
Семенов Владимир Георгиевич (UA),
Чигирик Александр Викторович (UA)

(73) Патентообладатель:

Закрытое акционерное общество “Экологоохранная фирма “КРЕОМА-ФАРМ” (UA)

Договор № РД0052354 зарегистрирован 09.07.2009

Извещение опубликовано: 20.08.2009 БИ: 23/2009


Categories: BD_2349000-2349999