Патент на изобретение №2157837
|
||||||||||||||||||||||||||
(54) ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ И ПРЕДВАРИТЕЛЬНОЙ ИДЕНТИФИКАЦИИ E.COLI 0157:H7
(57) Реферат: Изобретение предназначено для бактериологического исследования различных клинических материалов и объектов внешней среды. Среда малокомпонентна, содержит четыре ингредиента, не светочувствительна. В качестве источника азотистого питания микробов она содержит электролитдефицитную питательную основу с содержанием хлористого натрия 0,4-1,2%, в качестве ингибитора грамположительных микроорганизмов – кристаллический фиолетовый, в качестве индикатора кислотообразования – бромкрезоловый пурпуровый или бромтимоловый синий. Среда подавляет роение протеев, которые растут в виде изолированных колоний. Это позволяет выделить Е.coli O157:Н7 в чистой культуре. Изобретение повышает селективные свойства среды и упрощает ее состав. 1 табл. Изобретение относится к медицине, а именно к клинической микробиологии, и может быть использовано при бактериологическом исследовании различных клинических материалов и объектов внешней среды. В последние годы отмечаются вспышки эшерихиозов, вызванных высокопатогенным для человека штаммом E.Coli O157:Н7, который является возбудителем не только диарей, но и геморрагических колитов, гемолитического уремического синдрома и тромботической тромбоцитопенической пурпуры (1). В Японии в 1996 г. во время вспышек и спорадических случаев пострадало 9000 человек, 11-со смертельным исходом. Особенно опасна эта инфекция для детей, т.к. нарушает работу почек вплоть до летального исхода (2). Для диагностики заболевания, вызываемого вышеназванным микроорганизмом, необходимо выделение его в чистой культуре и последующая его идентификация. Известно использование для этих целей питательных сред Макконки-сорбитол агара и агара Жабо (3). Недостатком этих сред является необходимость введения в их состав дорогостоящих ингредиентов: желчных солей, метилумбеллиферил-бета-Д-глюкуронида (МИГ) и цефиксим-теллуритовой добавки, благодаря которым достигается селективность сред. Наиболее близким решением задачи того же назначения к заявляемому изобретению по совокупности признаков является сорбитол E. coli O157:Н7 агар (4), содержащий в качестве азотистого питания панкреатический гидролизат рыбной муки, экстракт пекарных дрожжей, натрия хлорид, Д-сорбит, натрия сульфит, натрия гидрофосфат, фуксин основной, агар. К причинам, препятствующим достижению указанного ниже технического результата при использовании известной среды, принятой за прототип, является то, что сорбитол E.coli О157:Н7 агар является слабо селективной средой, не подавляет ползучий рост (роение) протеев и в случае наличия их в исследуемом материале невозможно выделить искомый микроб – возбудитель в чистой культуре. Недостатком среды является также многокомпонентность состава и светочувствительность, вследствие чего она не подлежит хранению. Задача предлагаемого изобретения – повышение селективных свойств среды и упрощение ее состава. Указанный технический результат при осуществлении изобретения достигается тем, что предлагаемая среда содержит в качестве источника азотистого питания электролит дефицитную питательную основу с содержанием хлористого натрия 0,4-1,2%, в качестве ингибитора роста грамположительных микроорганизмов – кристаллический фиолетовый, в качестве индикатора кислотообразования – бромкрезоловый пурпуровый или бромтимоловый синий при следующем соотношении компонентов, г/л: Электролитдефицитная питательная основа с содержанием хлористого натрия 0,4-1,2% – 20,0-28,0 Д-сорбит – – 10,0-20,0 Кристаллический фиолетовый – 0,001-0,002 Бромкрезоловый пурпуровый или бромтимоловый синий – 0,03-0,05 Вода дистиллированная – остальное Готовая среда содержит 0,008-0,034% хлористого натрия, что позволяет рассматривать ее как электролитдефицитную. Дефицит солей в среде ингибирует образование у протеев жгутиков, что способствует росту этих микроорганизмов в виде изолированных колоний, тем самым создается возможность выделения E.coli O157:Н7 в чистой культуре. Содержание в среде кристаллического фиолетового подавляет рост грамположительных микроорганизмов, а бромкрезоловый пурпуровый или бромтимоловый синий позволяет провести предварительную идентификацию микроорганизмов по тесту расщепления сорбита: сорбитоположительные штаммы образуют колонии желтого цвета (E.coli O55:К59, S.typhimurium), сорбитоотрицательные – бесцветные (E. coli O157:Н7, Pr.mirabilis, Pr.vilgaris, Sh.flexneri). Среду получают следующим образом. Пример 1. К 10 кг белкового сырья (фарш рыбы) добавляют 20 л водопроводной воды, смесь перемешивают в течение 10-15 мин, нагревают до 48-50oC, вносят 1,1 кг фарша поджелудочной железы крупного рогатого скота или 0,3 кг панкреатина и ведут гидролиз в течение 5-6 часов до содержания аминного азота 0,5-0,6%. По окончании гидролиза смесь кипятят 10-15 мин и фильтруют. Фильтрат подщелачивают водным раствором аммиака до рН 8,2-8,5, кипятят 10-15 мин и фильтруют. Фильтрат упаривают до 50-60% сухих веществ, нагревают до 48-50oC и вносят в него агар из расчета: на 100 г упаренного гидролизата 35-40 г агара. Смесь перемешивают, гранулируют и высушивают при 50-60oC до остаточной влаги не более 7% и измельчают до порошкообразного состояния. Полученную сухую электролитдефицитную питательную основу, содержащую 0,4-1,2 % хлористого натрия, в количестве 20 г растворяют в 1 л дистиллированной воды, далее последовательно растворяют 10,0 г Д-сорбита, 0,03 г бромкрезолового пурпурного или бромтимолового синего и 0,001 г кристаллического фиолетового. Смесь нагревают до полного расплавления агара, стерилизуют 15 мин при 121oC и разливают в стерильные чашки Петри, предварительно охладив среду до 45-50oC, чашки со средой подсушивают в термостате при 37 1oC в течение 90-120 мин. Контроль качества среды осуществляют путем посева тест-штаммов E. coli O157:H7 N 214 и наиболее вероятных ассоциантов – Pr.mirabilis, Pr.Vulgaris Нх19, Sh.flexneri la 8516, S.typhimurium, E.coli N 3912/41 (O55: K59), St.aureus N 209 “P”.
Учет результатов производят через 18-20 ч инкубации посевов при 37oC.
Пример 2. Отличается от примера 1 тем, что в 1 литре воды растворяют 24 г питательной основы, 15 г Д-сорбита, 0,04 г бромкрезолового пурпурового или бромтимолового синего 0,0015 г кристаллического фиолетового. Далее согласно примеру 1.
Пример 3. Отличается от примеров 1,2 тем, что в 1 л воды растворяют 28 г питательной основы, 20 г Д-сорбита, 0,05 г бромкрезолового пурпурного или бромтимолового синего, 0,002 г кристаллического фиолетового. Далее согласно примеру 1.
Результаты бактериологического контроля предлагаемой и известной среды представлены в таблице.
Из таблицы видно, что предлагаемая среда имеет преимущество, так как она подавляет роение протеев, которые растут в виде изолированных О-форм колоний, что позволяет выделить E.coli O157:Н7 в чистой культуре, тем самым повышается эффективность диагностики при бактериологических исследованиях.
Известная среда не подавляет роение протеев, которые образуют по всей поверхности чашки вуалеобразный налет (Н-форма), что затрудняет выделение штамма E.coli O157:Н7 в чистой культуре.
Предлагаемая среда малокомпонентна, содержит 4 ингредиента, известная среда – 8. Кроме того, предлагаемая среда не содержит светочувствительных ингредиентов (сульфит натрия – фото, фуксин), вследствие чего не требует специальных условий хранения.
Предлагаемая среда экономически выгодна, проста в приготовлении, не требует дополнительных затрат. Использование ее в практике здравоохранения будет способствовать улучшению диагностики заболевания, вызываемого патогенным штаммом E.coli O157:Н7.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ1. Easfon Lorrise, Escherichia coli O157: Oceurrence, transmission and laboratory defection, Brit. Y.Biomed. Sce, 1997, 54, N 1 -P.57-64. 2. Shinoda Sumio, Yamamoto Shigeo, Tomochila Kenichi, Migoschi Shin-iche. Jap.J.Toxical and Enriron. Health, 1997,43, N 1 -P. 1-14. 3. Среды бактериологические сухие. Бактериологические тест-сыворотки и тест-антигены, краски. Каталог N 2, фирма “Гем”, ноябрь, 1997 г. Москва, с. 21,39. 4. Бактериологические среды для санитарной и клинической микробиологии, биотехнологии и контроля лекарственных средств. Каталог, изд. Третье, исправленное – Оболенск, 1998, С.21-22. Формула изобретения
Электролитдефицитная питательная основа из рыбы с содержанием хлористого натрия 0,4 – 1,2% – 20,0 – 28,0 Д-сорбит – 10,0 – 20,0 Кристаллический фиолетовый – 0,001 – 0,002 Бромкрезоловый пурпуровый или бромтимоловый синий – 0,03 – 0,05 Вода дистиллированная – Остальное РИСУНКИ
PD4A – Изменение наименования обладателя патента Российской Федерации на изобретение
(73) Новое наименование патентообладателя:
Извещение опубликовано: 20.03.2005 БИ: 08/2005
|
||||||||||||||||||||||||||

1oC в течение 90-120 мин. Контроль качества среды осуществляют путем посева тест-штаммов E. coli O157:H7 N 214 и наиболее вероятных ассоциантов – Pr.mirabilis, Pr.Vulgaris Нх19, Sh.flexneri la 8516, S.typhimurium, E.coli N 3912/41 (O55: K59), St.aureus N 209 “P”.
Учет результатов производят через 18-20 ч инкубации посевов при 37oC.
Пример 2. Отличается от примера 1 тем, что в 1 литре воды растворяют 24 г питательной основы, 15 г Д-сорбита, 0,04 г бромкрезолового пурпурового или бромтимолового синего 0,0015 г кристаллического фиолетового. Далее согласно примеру 1.
Пример 3. Отличается от примеров 1,2 тем, что в 1 л воды растворяют 28 г питательной основы, 20 г Д-сорбита, 0,05 г бромкрезолового пурпурного или бромтимолового синего, 0,002 г кристаллического фиолетового. Далее согласно примеру 1.
Результаты бактериологического контроля предлагаемой и известной среды представлены в таблице.
Из таблицы видно, что предлагаемая среда имеет преимущество, так как она подавляет роение протеев, которые растут в виде изолированных О-форм колоний, что позволяет выделить E.coli O157:Н7 в чистой культуре, тем самым повышается эффективность диагностики при бактериологических исследованиях.
Известная среда не подавляет роение протеев, которые образуют по всей поверхности чашки вуалеобразный налет (Н-форма), что затрудняет выделение штамма E.coli O157:Н7 в чистой культуре.
Предлагаемая среда малокомпонентна, содержит 4 ингредиента, известная среда – 8. Кроме того, предлагаемая среда не содержит светочувствительных ингредиентов (сульфит натрия – фото, фуксин), вследствие чего не требует специальных условий хранения.
Предлагаемая среда экономически выгодна, проста в приготовлении, не требует дополнительных затрат. Использование ее в практике здравоохранения будет способствовать улучшению диагностики заболевания, вызываемого патогенным штаммом E.coli O157:Н7.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ