Патент на изобретение №2272286

Published by on




РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ



ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА
ПО ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ СОБСТВЕННОСТИ,
ПАТЕНТАМ И ТОВАРНЫМ ЗНАКАМ
(19) RU (11) 2272286 (13) C1
(51) МПК

G01N33/48 (2006.01)

(12) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ПАТЕНТУ

Статус: по данным на 12.01.2011 – прекратил действие

(21), (22) Заявка: 2004127706/15, 16.09.2004

(24) Дата начала отсчета срока действия патента:

16.09.2004

(45) Опубликовано: 20.03.2006

(56) Список документов, цитированных в отчете о
поиске:
BRODIE В.В. et al. The estimation of antipyrine in biological material. J. Biol. Chem. 1949, vol.179, №25, p.25-39. АНДРЕЕВА и др. Высокоэффективная жидкостная хроматография антипирина – метод экспресс-диагностики функциональной активности монооксигеназной системы печени человека. Хим.-фарм. журн. 2000, т.34, №1, с.10-11. SHIVELY С.А. et al. A

Адрес для переписки:

630040, г.Новосибирск-40, ул. Охотская, 81-А, Новосибирский НИИ туберкулеза

(72) Автор(ы):

Петренко Татьяна Игоревна (RU),
Кизилова Наталья Сергеевна (RU),
Харламова Юлия Михайловна (RU),
Еремеева Людмила Ивановна (RU),
Кожанова Людмила Алексеевна (RU)

(73) Патентообладатель(и):

ГУ Новосибирский научно-исследовательский институт туберкулеза (ННИИТ) МЗ РФ (RU)

(54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИПИРИНА В СЛЮНЕ

(57) Реферат:

Изобретение относится к медицине, а именно к биохимическим методам исследования биологического материала, и может быть применено в лабораторной практике. Согласно способу определения антипирина в слюне центрифугирование супернатанта проводят при скорости 14000 об/мин в течение 5 минут, затем встряхивают смесь супернатанта с ZnSO4*7H2O и 0,75N NaOH в течение 1 минуты с последующим центрифугированием при 14000 об/мин 5 минут, а затем 100 мкл аликвоты рН 7,5-8 наносят в инжектор хроматографа, хроматографический анализ проводят при следующих условиях: неподвижная фаза (хроматографическая колонка) – пронтосил 120-5 С18 2*75 мм, dp=5 мк; подвижная фаза (элюент) – 100% ацетонитрил, фосфатный буфер рН 6,5. Режим хроматографирования: спектр ультрафиолетового поглощения – 244, 262, 280 нм, время 0,18 с, температура колонки 35°С, и определение проводят по калибровочному графику зависимости высоты хроматографического пика от концентрации препарата. Технический результат: упрощение, сокращение времени, повышение чувствительности и точности способа. При этом сокращаются количество рабочих растворов, число дозирующих процедур, время пробоподготовки, что способствует снижению трудозатрат на выполнение соответствующих лабораторных работ, исключается применение токсических веществ (хлороформа, серной кислоты). 2 табл.

(56) (продолжение):

CLASS=”b560m”sensitive gas-chromatographic assay using a nitrogen-phosphorus detector for determination of antipyrine and aminopyrine in biological fluids. Pharmacology. 1979, 19(5), р.228-236. RU 2228527 C2, 10.05.2004.

Изобретение относится к медицине, а именно к биохимическим методам исследования биологического материала, и может быть применен в лабораторной практике.

Антипириновая проба – очень чувствительный и надежный тест, позволяющий судить о функциональном состоянии монооксигеназной системы печени. Антипирин достаточно медленно выводится из организма, малотоксичен, имеет высокую биодоступность (97-100%), низкое связывание с белками плазмы, равномерно распределяется во всех биологических жидкостях организма и, что самое важное, метаболизм антипирина почти полностью осуществляется при участии цитохром Р450-зависимых монооксигеназ печени (1), о чем свидетельствует линейность отношений между антипирингидроксилазной активностью и периодом полувыведения антипирина, а также тесная корреляция показателей активности цитохрома Р450 в биоптатах печени человека и кинетики элиминации этого препарата (2).

На основании вышеперечисленного антипириновый тест используется для оценки активности микросомальных монооксигеназ печени и служит в качестве количественного критерия функционального состояния печени (3). Иногда антипириновый тест является единственным маркером нарушения функционального состояния печени при нормальных значениях биохимических проб (4). Хорошая корреляция между концентрацией антипирина в плазме и слюне дает возможность при исследовании использовать слюну (5). Метод определения антипирина в слюне неинвазивен и доступен в научной и клинической практике.

Существуют хроматографические методы определения содержания антипирина в слюне:

1. Извлечение антипирина осуществляется в следующем порядке: к 0,5 мл слюны добавляют 4,5 мл хлороформа, содержимое пробирки тщательно встряхивают в течение 10 минут с целью максимального перехода антипирина, содержащегося в биопробе, в хлороформ.

После чего отбирают хлороформную фракцию в специальные конические колбы и упаривают на водяной бане при t – 60°С под током воздуха. Сухой остаток растворяют в 0,2-0,5 мл ацетонитрила и 20 мкл аликвоты, вводят в инжектор хроматографической системы. Хроматографический анализ проводят при следующих условиях: неподвижная фаза (хроматографическая колонка) – “Econosil С-18” с размером зернистости 10 микрон (4,6*150 мм); подвижная фаза (элюент) – ацетонитрил: фосфатный буфер, рН – 6,0, в соотношении 35:65. Режим хроматографирования: спектр ультрафиолетового поглощения – 254 нм, скорость потока элюента – 1 мл/мин при давлении на помпе 1500 psi, температура колонки – 25°С. Пороговая чувствительность метода составляет 0,2 мкг/мл (8).

2. Осаждение плотного осадка слюны проводят следующим образом: к 200 мкл супернатанта добавляют 200 мкл смеси 0,1N серной кислоты и этанола (30:70 об.%) и встряхивают в течение 1 минуты, после чего пробу центрифугируют (7000 об/мин в течение 20 мин) и 5 мкл надосадочной жидкости вводят в хроматограф. Состав подвижной фазы: ацетат натрия (рН 6,7) – ацетонитрил (70:30 об/об), скорость потока 100 мкл/мин. Спектр ультрафиолетового поглощения – 250 нм. Пороговая чувствительность методики – 1 мкг/мл (9).

Однако к недостаткам этих методов относится то, что при пробоподготовке слюны используют токсические вещества, такие как: хлороформ, серная кислота.

Наиболее близким к заявленному изобретению по пробоподготовке является метод Броди (6) и соавторов в модификации Девидсона и Мак Инче (7) для определения антипирина в слюне, заключающийся в том, что больные принимают натощак антипирин из расчета 18 мг/кг массы тела. Через 3, 5, 7, 9, 11, 13 часов после приема антипирина собирают слюну в количестве 3 мл, центрифугируют в течение 10 минут при скорости 3000 об/мин. Забирают 150 мкл супернатанта, к которому добавляют 150 мкл дистиллированной воды и 150 мкл ZnSO4*7H2О и затем по каплям при постоянном встряхивании – 150 мкл 0,75N NaOH. После 10-минутного стояния содержимое из колб переливают в центрифужные пробирки и центрифугируют 15 минут при 3500 об/мин. В мерные пробирки помещают по 3 мл супернатанта, раствора стандарта и дистиллированной воды. Далее после добавления ко всем пробам 0,05 мл 4N H2SO4 определяют оптическую плотность пробы со слюной относительно пробы с водой на спектрофотометре при длине волны 350 нм. После определения исходной плотности пробы ставят в водяную баню, температура которой 22°С. Через 5 минут во все пробирки добавляют 0,1 мл NaNO2, содержимое тщательно перемешивают и через 25 минут проводят повторное измерение оптической плотности проб относительно пробы с водой. Оптическая плотность стабильна в течение 20 минут, затем начинает постепенно снижаться. В качестве стандарта используют растворы антипирина концентрацией 8 мг/л и 12 мг/л.

Существенным недостатком данного метода являются: большие затраты времени, недостаточная чувствительность, необходимость химической модификации препарата.

Целью данного изобретения является его упрощение, сокращение времени, что позволяет быстро и с высокой точностью определять количество антипирина в слюне. Цель достигается путем осаждения балластных компонентов с последующим центрифугированием супернатанта при скорости 14000 об/мин в течение 5 минут, встряхиванием смеси супернатанта с ZnSO4*7H2О и 0,75N NaOH в течение 1 минуты с центрифугированием при 14000 об/мин 5 минут, а затем хроматографированием 100 мкл аликвоты рН 7,5-8 методом обращенной-фазной высокоэффективной жидкостной хроматографии (ОФ ВЭЖХ) при следующих условиях: неподвижная фаза (хроматографическая колонка) – пронтосил 120-5 C18 2*75 мм, dp=5 мк; подвижная фаза (элюент) – 100% ацетонитрил, фосфатный буфер рН 6,5. Режим хроматографирования: спектр ультрафиолетового поглощения – 244, 262, 280 нм, время 0,18 с, температура колонки 35°С.

Способ осуществляют следующим образом: пробу слюны (3 мл) собирают через 3, 5, 7, 9, 11, 13 часов после приема антипирина и центрифугируют в течение 10 минут при скорости 3000 об/мин, забирают 300 мкл супернатанта и центрифугируют в течение 5 минут при скорости 14000 об/мин.

Отбирают 150 мкл супернатанта, добавляют 150 мкл ZnSO4*7H2О и 170 мкл 0,75N NaOH, встряхивают 1 минуту, центрифугируют 5 минут при 14000 об/мин, отбирают 100 мкл аликвоты рН 7,5-8 и наносят в инжектор хроматографической системы. Хроматографический анализ проводят при следующих условиях: неподвижная фаза (хроматографическая колонка) – пронтосил 120-5 С18 2*75 мм, dp=5 мк; подвижная фаза (элюент) – 100% ацетонитрил, фосфатный буфер рН 6,5. Режим хроматографирования: спектр ультрафиолетового поглощения – 244, 262, 280 нм, время 0,18 с, скорость потока элюента 100 мкл/мин, температура колонки 35°С.

Количественное определение проводят по калибровочному графику зависимости высоты хроматографического пика от концентрации препарата (см. таблицу 1).

Из таблицы 1 видно, что полученная концентрация антипирина методом высокоэффективной жидкостной хроматографии соответствует концентрации стандарта градуировочных смесей на основе слюны.

В Новосибирском НИИ туберкулеза было исследовано 590 образцов слюны на спектрофотометре СФ-16, пороговая чувствительность метода составляла 1 мкг/мл. Параллельно было проведено исследование 430 проб предлагаемым нами хроматографическим методом, пороговая чувствительность составляла 0,2 мкг/мл.

Сравнительная характеристика данных высокоэффективной жидкостной хроматографии с результатами определения по способу Броди и соавторов в модификации Девидсона и Мак Инче доказывает возможность обнаружения низких концентраций антипирина (см. таблицу 2).

Таким образом, в отличие от других хроматографических методов, перечисленных выше, предлагаемый способ определения антипирина в слюне исключает применение токсических веществ (хлороформа, серной кислоты).

В сравнении с известным способом Броди и соавторов в модификации Девидсона и Мак Инче предлагаемый метод позволяет повысить точность, чувствительность определения антипирина в слюне, а также более прост в исполнении. В нем уменьшено количество рабочих растворов, сокращено число дозирующих процедур, сокращено время пробоподготовки, что способствует снижению трудозатрат на выполнение соответствующих лабораторных работ. В связи с этим возможно широкое внедрение метода в практическую деятельность медицинских учреждений, занимающихся лечением пациентов гепатотоксичными химиопрепаратами (онкологических, фтизиатрического профиля) либо страдающих заболеваниями печени (терапевтических и инфекционных стационаров).

Таблица 1
Результаты определения антипирина в модельных растворах слюны предлагаемым способом, р=0,95, n=5
Концентрация стандарта, мкг/мл По калибровочному графику, мкг/мл
10 9,9±0,01
4,7 4,32±0,05
2,5 2,39±0,04
1,18 1,15±0,01
0,6 0,57±0,02
0,3 0,27±0,02
Таблица 2
Результаты определения антипирина в слюне методом спектрофотометрии (СФ) и предлагаемым способом с использованием высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ)
Время, час Концентрация антипирина, M±m, мкг/мл
СФ, n=10 ВЭЖХ, n=10
3 4,02±0,46 3,77±0,4
5 3,07±0,41 2,73±0,3
7 2,84±0,25 1,73±0,2
9 2,3±0,32 1,21±0,15
11 1,98±0,24 0,93±0,18
13 1,18±0,2 0,35±0,1

Список литературы:

7. Davidsson D., Mac Intyre J. – Biochem. J., 1956, v.62. №3, p.37P-38P.

8. Гичев Ю.Ю. Влияние пищевых индолов на активность монооксигеназной системы печени у больных вирусными гепатитами: Автореф. дисс…. канд.мед. наук. – Новосибирск, 2003. – 25 с.

Формула изобретения

Способ определения антипирина в слюне, включающий сбор слюны через 3, 5, 7, 9, 11, 13 часов после приема антипирина, центрифугирование 3 мл слюны 10 мин при 3000 об/мин, добавление к 150 мкл супернатанта 150 мкл дистиллированной воды, 150 мкл ZnSO4·7H2O и 150 мкл 0,75 N NaOH, последующее центрифугирование смеси, отличающийся тем, что полученный после центрифугирования слюны супернатант в количестве 300 мкл центрифугируют 5 минут при 14000 об/мин, к смеси супернатанта и ZnSO4·7Н2О добавляют 170 мкл 0,75 N NaOH, встряхивают смесь 1 минуту и центрифугируют 5 минут при 14000 об/мин, затем 100 мкл аликвоты рН=7,5-8 хроматографируют методом ОФ ВЭЖХ при следующих условиях: неподвижная фаза – пронтосил 120-5 С18 2·75 мм, dp=5 мк; подвижная фаза – 100% ацетонитрил, фосфатный буфер рН=6,5, спектр ультрафиолетового поглощения – 244, 262, 280 нм, время 0,18 с, температура колонки 35°С, и определение проводят по калибровочному графику зависимости высоты хроматографического пика от концентрации препарата.


MM4A – Досрочное прекращение действия патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе

Дата прекращения действия патента: 17.09.2007

Извещение опубликовано: 10.05.2009 БИ: 13/2009


Categories: BD_2272000-2272999