|
(21), (22) Заявка: 2004111201/13, 12.04.2004
(24) Дата начала отсчета срока действия патента:
12.04.2004
(43) Дата публикации заявки: 20.10.2005
(45) Опубликовано: 10.02.2006
(56) Список документов, цитированных в отчете о поиске:
RU 2093478 С1, 20.10.1997. RU 2126041 С1, 10.02.1999. SU 2033498 А1, 15.08.1976. DE 10308170, 20.11.2003.
Адрес для переписки:
450062, г.Уфа, ул. Космонавтов, 1, ГОУ ВПО УГНТУ, патентная группа
|
(72) Автор(ы):
Ягафарова Гузель Габдулловна (RU), Леонтьева Светлана Валерьевна (RU), Пузин Юрий Иванович (RU), Рольник Любовь Зелиховна (RU)
(73) Патентообладатель(и):
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Уфимский государственный нефтяной технический университет (ГОУ ВПО УГНТУ) (RU)
|
(54) СПОСОБ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ОЧИСТКИ СТОЧНЫХ ВОД ПРЕДПРИЯТИЙ ХИМИЧЕСКОЙ ПРОМЫШЛЕННОСТИ ПРОИЗВОДСТВА АКРИЛОВОЙ КИСЛОТЫ И ЕЕ ПРОИЗВОДНЫХ
(57) Реферат:
Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в химической промышленности. Разработан способ очистки сточных вод путем обработки их ассоциацией микроорганизмов, состоящей из клеток штамма Fusarium sp. №56 и клеток штамма Bacillus subtilis BKM 1742 Д, смешанных в соотношении 1:1. Применение изобретения обеспечивает возможность деградации полимерных производных акриловой кислоты, содержащихся в сточных водах предприятий, занятых в производстве акриловой кислоты и ее производных. 1 ил., 4 табл. 
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способу очистки сточных вод с помощью микроорганизмов, и может быть использовано для биологической очистки сточных вод предприятий химической промышленности производства производных акриловой кислоты: полиакриламида (ПАА), полиакриловой кислоты (ПАК), акрилонитрила (АН), акриламида (АА), акриловой кислоты.
Акриловая кислота и ее производные являются крупнотоннажными продуктами, используемыми в лакокрасочном, горнодобывающем, целлюлозобумажном производстве. Прямой сток отработанных вод с заводов может вызвать сильное загрязнение окружающей среды вследствие их высокой токсичности.
Существующие в настоящее время химические и физико-химические способы очистки сточных вод от данных соединений довольно дороги, не всегда эффективны и трудоемки. Наиболее доступными, экономически рентабельными и достаточно эффективными являются микробиологические методы очистки воды, основанные на способности микроорганизмов использовать для своего метаболизма органические соединения в качестве единственного источника углерода и энергии.
Известен способ очистки сточных вод (прототип) посредством штамма бактерий Pseudoalcalgens, способного деградировать АА, АК в концентрации 1 г/л за 48 часов, НАК в концентрации 1 г/л за 18 часов [1].
Основным недостатком известного способа является неспособность вышеупомянутых микроорганизмов деградировать высокомолекулярные полимерные производные акриловой кислоты: полиакриламид (ПАА), полиакриловую кислоту (ПАК) и др.
Задачей изобретения является разработка способа очистки сточных вод, содержащих высокомолекулярные полимерные производные акриловой кислоты: ПАА, ПАК и др. с высокой деструктивной активностью.
Указанная задача решается тем, что в способе биологической очистки сточных вод, включающем обработку сточных вод ассоциацией микроорганизмов, согласно изобретению обработку проводят с помощью использования непатогенного микромицета Fusarium sp. №56 [2] и непатогенных бактерий Bacillus subtilis BKM 1742 Д [3] в соотношении 1:1.
Способ осуществляется следующим образом: биологическая очистка осуществляется в аэротенке, куда подается суспензия ассоциации из микромицета Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis BKM 1742 Д в соотношении 1:1 и сточные воды. В аэротенк осуществляется подача воздуха со скоростью 300 кг/ч·м3. Очистка осуществляется в периодическом режиме.
Пример 1:
Для изучения процессов биодеструкции высокомолекулярных полимерных производных акриловой кислоты: ПАА, ПАК, были проведены эксперименты в жидкой минеральной среде Чапека-Докса (стерильной). В качестве единственного источника углерода и энергии добавляли соответствующий реагент: ПАА, ПАК в количестве 300, 500, 1000 мг/л. Для биодеградации акрилов в среду ввели ассоциацию микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерии Bacillus subtilis BKM 1742 Д взятых в отношении 1:1 в количестве 3 об.%. Культивирование проводили в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1 в течение 3 суток. Колбы с минеральной средой, содержащие производные акриловой кислоты (ПАА, ПАК), но не инокулированные микроорганизмами, служили контролем.
О степени биодеструкции акрилов судили по уменьшению их количества, а также косвенно по увеличению биомассы и изменению рН среды.
Количество ПАА и ПАК определяли с помощью дитизона, который дает окрашенный комплекс с акриловыми полимерами, оптическую плотность которого определяли спектрофотометрическим методом на приборе “Specol” при длине волны 480 нм [4].
Изменение рН культуральной жидкости определяли путем замера рН с помощью иономера И-130,2 М в начале и конце культивирования.
Биомассу определяли весовым методом, используя мембранные фильтры №2 (средний диаметр пор 0,05 мкм), которые предварительно доводили до постоянного веса.
Результаты приведены в табл.1.
Как видно из данных табл. 1, ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерии Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способна расти в среде, содержащей в качестве единственного источника углерода и энергии ПАК или ПАА. При этом наблюдается увеличение биомассы, которое составляет на 3 сутки для ПАК 0,096 (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,205 (при нач. концентрации 500 мг/л) и 0,395 (при нач. концентрации 1000 мг/л), для ПАА – 0,082 (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,200 (при нач. концентрации 500 мг/л), 0,378 (при нач. концентрации 1000 мг/л). Также наблюдалось изменение рН среды в сторону подщелачивания во всех опытах.
Степень биодеструкции ПАК на 3 сутки культивирования составила при начальной концентрации 300 мг/л – 85,2%, 500 мг/л – 83,5%, 1000 мг/л – 80,1%. Степень биодеструкции ПАА – 80,1%, 79,1%, 77,3% соответственно.
Таким образом, предложенная ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1 способна деструктировать высокомолекулярные полимерные производные акриловой кислоты: ПАА и ПАК.
Пример 2:
С целью изучения процессов биодеструкции мономерных производных акриловой кислоты: АН, АА, АК был проведен аналогичный опыт по вышеописанной методике.
Количество АА определяли по УФ-спектрам на спектрографе UV-VIS-NIR-3100 (“Shimadzu”, Япония) в УФ – области при длине волны 251,7 нм. Предварительно АА из среды экстрагировали амиловым спиртом.
Количество АН определяли титрометрически при помощи сульфита натрия [5].
Результаты приведены в табл.4-6
Как видно из данных табл. 4-6, ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способна расти в среде, содержащей в качестве единственного источника углерода и энергии АН или АА. При этом наблюдается увеличение биомассы, которое составляет на третьи сутки для АН 0,109 г/л (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,214 г/л (при нач. концентрации 500 мг/л) и 0,415 г/л (при нач. концентрации 1000 мг/л), а для АА – 0,102 г/л (при нач. концентрации 300 мг/л), 0,210 г/л (при нач. концентрации 500мг/л), 0,403 г/л (при нач. концентрации 1000 мг/л). Также наблюдалось изменение рН среды в сторону подщелачивания во всех опытах.
Степень биодеструкции АН на 3 сутки культивирования составила при начальной концентрации 300 мг/л – 93,8%, 500 мг/л – 90,4%, 1000 мг/л – 86,9%. Степень биодеструкции АА – 92,2%, 88,6%, 85,0% соответственно.
Таким образом, предложенная ассоциация микромицетов Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способна деструктировать мономерные производные акриловой кислоты: АН и АА.
Пример 3:
С целью изучения процессов биодеструкции производных акриловой посредством ассоциации микромицетов Fusarium sp. Ns 56 и бактерии Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, была приготовлена модельная сточная вода (МСВ).
В состав МСВ в качестве единственного источника углерода и энергии были добавлены производные акриловой кислоты (АН, АА, ПАК, ПАА) из расчета 250 мг/л каждого. Также добавляли минеральные соли: (NH4)2SO4 – 1 г/л, К2HPO4 – 0,5 г/л, MgSO4 PH2O – 0,5 г/л и микроэлементы в следовых количествах.
Очистку проводили в течение 3 суток на модельной установке (см. чертеж), которая состоит из: аппарата для предварительного выращивания микроорганизмов 1, аэротенка 2, отстойника 3, емкости для подготовки МСВ 4 и емкости для очищенной сточной воды 5. Потоки: I – микроорганизмы, II – МСВ, III – воздух, IV – очищенная вода. Скорость подачи воздуха составила 300 кг/ч м3.
О степени биодеструкции акрилов судили по уменьшению их количества, а также косвенно по увеличению биомассы и изменению рН среды по вышеописанным методикам.
Результаты опыта представлены в табл.3-4
Как видно из данных, приведенных в таблице 3, в МСВ наблюдалось увеличение биомассы уже на 1 сутки очистки, которое составило на 1 сутки 0,302 г/л, а на третьи 0,405 г/л. Также наблюдалось изменение рН среды в сторону подщелачивания. Так, в первые сутки рН изменилось от 7,80 до 7,82, и на третьи до 7,87.
При этом степень биодеструкции производных акриловой кислоты в МСВ уже на первые сутки очистки составила АН – 73,1%, АА – 69,6%, ПАК+ПАА – 58,5%, а на третьи сутки: АН – 93,8%, АА – 92,2%, ПАК+ПАА – 83,5% (таблица 4).
Таким образом, предложенный способ биологической очистки сточных вод с помощью ассоциации микромицетов Fusarium sp. Ns 56 и бактерий Bacillus subtilis 1742 Д, взятых в отношении 1:1, способен деструктировать производные акриловой кислоты в МСВ.
Таблица 1 Результаты роста микроорганизмов в среде с полимерными производными акриловой кислоты |
Соединение |
Параметр роста |
Параметр роста в начале культивирования |
Изменение параметров роста на 3 сутки культивирования |
Нач. концентрация 300 мг/л |
Нач. концентрация 500 мг/л |
Нач. концентрация 1000 мг/л |
ПАК |
рН |
7,80 |
7,86 |
7,86 |
7,86 |
биомасса, г/л |
0,008 |
0,125 |
0,123 |
0,120 |
биодеструкция, % |
– |
85,2 |
83,5 |
80,1 |
ПАА |
рН |
7,80 |
7,86 |
7,86 |
7,85 |
биомасса, г/л |
0,008 |
0,120 |
0,118 |
0,117 |
биодеструкция, % |
– |
80,1 |
79,1 |
77,3 |
Таблица 2 Результаты роста микроорганизмов в среде с мономерными производными акриловой кислоты |
Соединение |
Параметр роста |
Параметр роста в начале культивирования |
Изменение параметров роста на 3 сутки культивирования |
Нач. концентрация 300 мг/л |
Нач. концентрация 500 мг/л |
Нач. концентрация 1000 мг/л |
АН |
рН |
7,80 |
7,86 |
7,87 |
7,87 |
биомасса, г/л |
0,008 |
0,144 |
0,142 |
0,140 |
биодеструкция, % |
– |
93,8 |
90,4 |
86,9 |
АА |
рН |
7,80 |
7,86 |
7,87 |
7,86 |
биомасса, г/л |
0,008 |
0,139 |
0,138 |
0,135 |
биодеструкция, % |
– |
92,2 |
88,6 |
85,0 |
Таблица 3 |
Результаты роста ассоциации в МСВ |
нач. |
1 сут. |
2 сут. |
3 сут. |
биомасса, г/л |
0,008 |
0,302 |
0,355 |
0,405 |
изменение рН среды |
7,80 |
7,82 |
7,85 |
7,87 |
Таблица 4 |
Степень биодеструкции производных акриловой кислоты в МСВ через 3 суток очистки |
соединение |
степень биодеструкции, % |
1 сут. |
2 сут. |
3 сут. |
АН |
73,1 |
92,6 |
93,8 |
АА |
69,6 |
90,3 |
92,2 |
ПАК+ПАА |
58,5 |
70,2 |
83,5 |
Литература
3. А.С. СССР №1742226, МКИ5
4. Шарипов А.У., Долганская В.Ю. Инструкция по количественному анализу акриловых полимеров в водных расворах. Тюмень, 1987 – 19 с.
Формула изобретения
Способ биологической очистки сточных вод предприятий химической промышленности производства акриловой кислоты и ее производных, включающий обработку сточных вод ассоциацией микроорганизмов, отличающийся тем, что обработку проводят с помощью использования ассоциации из микромицета Fusarium sp. №56 и бактерий Bacillus subtilis ВКМ 1742 Д в соотношении 1:1.
РИСУНКИ
MM4A – Досрочное прекращение действия патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе
Дата прекращения действия патента: 13.04.2007
Извещение опубликовано: 27.02.2008 БИ: 06/2008
|
|