Патент на изобретение №2260621

(54) СРЕДА ДЛЯ ПЕРЕПРОГРАММИРОВАНИЯ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ЖИВОТНЫХ

(57) Реферат:

Изобретение относится к биологии и медицине, конкретно к средам для перепрограммирования стволовых клеток человека и животных. Среда для биохимического перепрограммирования стволовых клеток человека и животных наряду со средой DI-MEM, эмбриональной телячьей сывороткой, инсулином, 5-азацитидином, L-глютамином дополнительно содержит среду F-12, диметилсульфоксид, дексаметазон, гидрокортизон, N 6-2′-дибутирил 3’5 циклический монофосфат, этаноламид при заданном соотношении компонентов. Изобретение позволяет повысить эффективность перепрограммирования стволовых клеток в направлении кардиоминогенеза. 2 ил.

(56) (продолжение):

CLASS=”b560m”животных клеток. Методы. Под ред. Р.ФРЕШНИ. – М.: Мир, 1989, с.48-52.

Изобретение относится к биологии и медицине, конкретно к средам для перепрограммирования стволовых клеток человека и животных.

Известны среды для перепрограммирования стволовых клеток человека и животных, содержащие солевую основу, аминокислоты, липиды, углеводы, витамины, микроэлементы, антибиотики, сульфаниламиды, эмбриональную телячью сыворотку, дифференцирующие факторы, например, модифицированные среды D-MEM [1, 2]. Однако данные среды содержат только один дифференцирующий фактор, например диметилсульфоксид, дексаметазон. Это приводит к тому, что перепрограммированию в направлении миогенеза и кардиомиогенеза подвержены не более 20-30% стволовых клеток [3, 4].

Наиболее близкой по составу к предлагаемой среде является среда для биохимического перепрограммирования клеток, которая содержит среду DI-MEM, 10% эмбриональную телячью сыворотку, антибиотики, дифференцирующий фактор в концентрации 0,1-100 ммоль/л, 5-азацитидин и вспомогательные факторы в концентрации 1 ммоль/л инсулин или 10 нг/мл трансформирующий фактор роста [5, 6]. Данная среда, благодаря наличию дифференцирующего фактора, приводит к перепрограммированию стволовых клеток в миоциты и кардиомиоциты. Однако дозы 5-азацитидина, превышающие концентрацию 50 ммоль/л вызывают гибель более 50% клеток. Используемое в указанной среде сочетание и концентрация компонентов, а также присутствие указанного дифференцирующего фактора является причиной недостаточно высокого выхода клеток с требуемыми свойствами, таким образом способствует перепрограммированию только 30-50% стволовых клеток в направлении кардиомиогенеза.

Новая техническая задача – повышение эффективности перепрограммирования стволовых клеток в направлении кардиомиогенеза за счет повышения выхода кардиомиоцитов.

Поставленную задачу решают применением новой среды, содержащей среду DI-MEM, эмбриональную телячью сыворотку, антибиотики и сульфаниламиды, инсулин, 5-азацитидин, L-глютамин, причем она дополнительно содержит среду F-12, диметилсульфоксид, дексаметазон, гидрокортизон, N6-2′-дибутирил 3’5 циклический монофосфат, этаноламид при следующем соотношении компонентов (г/л):

Отличие предлагаемого изобретения от прототипа заключается в том, что среда дополнительно содержит среду F-12, диметилсульфоксид, дексаметазон, гидрокортизон, N6-2′-дибутирил 3’5 циклический монофосфат, этаноламид при следующем соотношении компонентов (г/л):

Сравнение заявляемого технического решения с известными показывает, что предлагается описание композиции ингредиентов среды для перепрограммирования клеток человека и животных, позволяющей повысить эффективность перепрограммирования стволовых клеток, в направлении кардиомиогенеза, не обнаружено в известных литературных источниках. С учетом изложенного, следует считать заявляемое решение соответствующее критерию «существенные отличия».

Применение данной среды в эксперименте на клетках животных и человека показало, что она соответствует критерию «промышленно применимо» при проведении процедуры перепрограммирования стволовых клеток.

Технология приготовления среды для перепрограммирования стволовых клеток включает следующие операции:

Получение культуры in vitro стволовых клеток человека по общепринятой технологии [7];

– смешивание ингредиентов среды для перепрограммирования стволовых клеток до полного растворения веществ в количествах согласно предлагаемой формуле изобретения,

– добавление перепрограммируемой среды в культуру ткани стволовых клеток и инкубация в ней в течение 1-14 суток при 37°С, 100% влажности, 5% СО₂;

– определение доли мышечных клеток в культуре и использование клеток в соответствии с поставленными задачами (клеточный банк, клеточная терапия и т.п.).

Полученная среда для перепрограммирования стволовых клеток содержит (г/л):

Концентрации компонентов в предлагаемой среде для перепрограммирования стволовых клеток человека и животных подобраны на основании интерпретации данных экспериментальных исследований.

В качестве среды для сравнения (прототипа) использовали известный состав, предложенный Р.Zuk с соавт. (2001) [8]. При этом содержание эмбриональной сыворотки, 5-азацитидина, инсулина, антибиотиков и L-глютамина в каждом из экспериментов соответствовало их содержанию в предлагаемой среде для перепрограмирования стволовых клеток.

Пример 1

Культуру стволовых клеток из костного мозга крыс породы «Вистар» получали по стандартной методике путем культивирования кариоцитов в 50 мл культуральных флаконах в течение 14 суток при 37°С, 100% влажности, 5% СО₂. Использовали среду состоящую из 80% среды D-MEMLG, 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 мкг/мл гентамицина, 200 мг/мл L-глютамина [8]. Через 14 суток наблюдался рост колоний, состоящих из мезенхимальных фибробластоподобных клеток (рис.1) (эффективность клонирования 1-4×10⁵ клеток на мл). На Фиг.1 (см. приложение) представлен фрагмент колонии фибробластоподобных стволовых клеток, выросших на 14 сутки из клеток костного мозга крыс породы «Вистар». Окраска азур-II эозин, ув. 40х.

На 14 сутки удалили надосадочную жидкость и заменяли средой для биохимического перепрограммирования стволовых клеток, содержащей (г/л):

Через 1-14 суток после культивирования материал фиксировали, окрашивали азур-II эозином или проводили электронно-микроскопическое исследование для определения доли мышечных клеток.

В контроле использовали среду-прототип, содержащую (г/л):

Структурно-функциональный анализ культуры полученных клеток показал, что количество перепрограммируемых клеток в прототипе составило 33,34±2,7%, а в предлагаемой среде 47,5±3,3 (Pu<0,05), что достоверно выше, чем у прототипа.

На фиг.2. представлена электронная микроскопия культуры стволовых клеток, обработанных средой для культивирования, дифференцирующихся в кардиомиоциты на 28 сутки культивирования in vitro (см. приложение).

Пример 2

Культуру стволовых клеток из костного мозга крыс породы «Вистар» получали по стандартной методике путем культивирования кариоцитов в 50 мл культуральных флаконах в течение 14 суток при 37°С, 100% влажности, 5% CO₂. Использовали среду, содержащую 80% среды D-MEMLG, 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 мкг/мл гентамицина, 200 мг/мл L-глютамина [8]. Через 14 суток наблюдался рост колоний (эффективность клонирования 1-4×10⁵ клеток на мл), состоящих из мезенхимальных фибробластоподобных клеток.

На 14 сутки удалили надосадочную жидкость и заменяли средой для перепрограммирования стволовых клеток, содержащей (г/л):

Через 1-14 суток после культивирования материал фиксировали, окрашивали азур-II эозином или проводили электронно-микроскопическое исследование для определения доли мышечных клеток.

Структурно-морфологический анализ выросших культур показал, что количество перепрограммируемых клеток в прототипе составило 42,6±3,5%, в предлагаемой среде 61,54±2,3% (Pu<0,05), что достоверно выше, чем у прототипа.

Пример 3

Культуру стволовых клеток из костного мозга человека, взятого во время операции из бедренной кости получали по стандартной методике путем культивирования кариоцитов в 50 мл культуральных флаконах в течение 14 суток 37°С, 100% влажности, 5% СО₂. Использовали среду, состоящую из 80% среды D-MEMLG, 20% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 мкг/мл гентамицина, 200 мг/мл L-глютамина [8]. Через 14 суток наблюдался рост колоний (эффективность клонирования 1-4×10⁵ клеток на мл), состоящих из мезенхимальных фибробластоподобных клеток.

На 14 сутки удалили надосадочную жидкость и заменяли средой для перепрограммирования стволовых клеток, содержащей (г/л):

Через 1-14 суток после культивирования материал фиксировали, окрашивали азур-II эозином или проводили электронно-микроскопическое исследование для определения доли мышечных клеток.

В контроле использовали среду-прототип, содержащую (г/л):

Структурно-морфологический анализ выросших культур показал, что количество перепрограммируемых клеток в прототипе составило 45,3±1,1%, в предлагаемой среде 55,3,5±1,9 (Pu<0,05), что достоверно выше, чем у прототипа.

Обоснование выбора ингредиентов

Диметилсульфоксид является стабилизатором внутриклеточной воды в клетках, а также фактором, способствующим мышечной дифференцировке стволовых клеток. Патогенетический механизм действия на родоначальные клетки не известен [4, 5].

Дексаметазон и гидрокортизон являются глюкокортикоидами, принимающими участие в процессах пролиферации и дифференцировки стволовых клеток. Существуют внутриядерные рецепторы в клетках-мишенях к данным гормонам. В дозах более 0,001 г/л вызывают угнетение клеточных функций [1, 6].

N 6-2′-дибутирил 3’5 циклический монофосфат является внутриклеточным мессенджером, принимающим участие в экспрессии генов, ответственных за миогенез [1, 7].

Этаноламид – кофактор, способствующий кардиомиогенезу [1, 8].

Среда F-12 используется в сочетании со средой D-MEM или DI-MEM для выращивания клеток мезенхимальной природы [1].

Таким образом, применение предлагаемой среды для перепрограммирования стволовых клеток человека и животных позволяет увеличить выход образования мышечных клеток за счет взаимного усиления дифференцировочного воздействия в сторону кардиомиогенеза.

Список используемой литературы

1. Культура животных клеток. Методы/ Р.Фрешни. – М.: Мир. – 1989.

2. Биология развития млекопитающих. Методы/ М.Манк. – М.: Мир, 1990.

7. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. Томск, ТГУ, 1992.

Формула изобретения

Среда для перепрограммирования стволовых клеток человека и животных, содержащая среду DI-MEM, эмбриональную телячью сыворотку, инсулин, 5-азацитидин, L-глютамин, гентамицин, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит среду F-12, диметилсульфоксид, дексаметазон, гидрокортизон, N 6-2′-дибутирил 3’5 циклический монофосфат, этаноламид при следующем соотношении компонентов, г/л:

РИСУНКИ

MM4A – Досрочное прекращение действия патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе

Дата прекращения действия патента: 01.08.2006

Извещение опубликовано: 27.07.2007 БИ: 21/2007